| 致谢 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-13页 |
| 英文摘要 | 第13-17页 |
| 第一章 植物过敏性细胞死亡机理的研究进展 | 第17-50页 |
| 1．1 植物抗病基因介导的抗病性 | 第17-19页 |
| 1．2 植物HR中细胞死亡和抗病防卫反应的相互独立性 | 第19页 |
| 1．3 诱导植物HR细胞死亡的信号分子 | 第19-24页 |
| 1．3．1 钙离子 | 第20页 |
| 1．3．2 活性氧 | 第20-21页 |
| 1．3．3 一氧化氮 | 第21-22页 |
| 1．3．4 水杨酸 | 第22页 |
| 1．3．5 信号分子之间的相互关系 | 第22-24页 |
| 1．4 与植物HR细胞死亡信号传导相关的基因 | 第24-29页 |
| 1．4．1 RAR1基因 | 第25-26页 |
| 1．4．2 EDS1和NDR1基因 | 第26-27页 |
| 1．4．3 ACD11基因 | 第27-28页 |
| 1．4．4 Lls1和LSD1基因 | 第28页 |
| 1．4．5 其它基因 | 第28-29页 |
| 1．5 线粒体在植物HR细胞死亡中的作用 | 第29-32页 |
| 1．5．1 线粒体在动物细胞凋亡中的作用 | 第29-30页 |
| 1．5．2 线粒体与植物HR细胞死亡的关系 | 第30-32页 |
| 1．6 植物HR细胞死亡中与凋亡蛋白类似功能的基因 | 第32-33页 |
| 1．7 植物HR细胞死亡中与caspase类似功能的基因 | 第33-35页 |
| 1．8 本研究的背景及目标 | 第35-37页 |
| 参考文献 | 第37-50页 |
| 第二章 水稻-白叶枯病菌互作中活性氧和NO的产生与细胞死亡的关系 | 第50-71页 |
| 2．1 材料与方法 | 第50-54页 |
| 2．1．1 供试水稻悬浮细胞 | 第50-51页 |
| 2．1．2 供试病原菌 | 第51页 |
| 2．1．3 水稻悬浮细胞接种白叶枯病菌 | 第51页 |
| 2．1．4 细胞死亡的分析 | 第51-52页 |
| 2．1．5 O_2~（．-）的测定 | 第52页 |
| 2．1．5．1 细胞色素c法 | 第52页 |
| 2．1．5．2 XTT法 | 第52页 |
| 2．1．6 H_2O_2的测定 | 第52-53页 |
| 2．1．6．1 二甲苯酚橙法 | 第52页 |
| 2．1．6．2 H_2DCF-DA法 | 第52-53页 |
| 2．1．7 NO的测定 | 第53页 |
| 2．1．8 抗氧化酶的提取和活性测定 | 第53-54页 |
| 2．1．8．1 酶液的提取 | 第53页 |
| 2．1．8．2 超氧物歧化酶（SOD）的活性测定 | 第53页 |
| 2．1．8．3 过氧化氢酶（CAT）的活性测定 | 第53页 |
| 2．1．8．4 过氧化物酶（POD）的活性测定 | 第53-54页 |
| 2．1．8．5 抗坏血酸过氧化物酶（APX）的活性测定 | 第54页 |
| 2．1．8．6 酶液中蛋白质浓度的测定 | 第54页 |
| 2．1．9 抗氧化剂和NO的抑制剂与释放剂的处理 | 第54页 |
| 2．2 结果与分析 | 第54-64页 |
| 2．2．1 HR细胞死亡 | 第54-55页 |
| 2．2．2 接种后水稻细胞活性氧的产生动态 | 第55-58页 |
| 2．2．2．1 O_2~（．-）的产生动态 | 第55-57页 |
| 2．2．2．2 H_2O_2的产生动态 | 第57-58页 |
| 2．2．3 接种后水稻细胞NO产生的变化 | 第58-59页 |
| 2．2．4 接种后抗氧化酶活性的变化 | 第59-62页 |
| 2．2．4．1 SOD活性的变化 | 第59页 |
| 2．2．4．2 CAT活性的变化 | 第59-60页 |
| 2．2．4．3 POD活性的变化 | 第60页 |
| 2．2．4．4 APX活性的变化 | 第60-62页 |
| 2．2．5 抗氧化剂处理后对HR细胞死亡的影响 | 第62页 |
| 2．2．6 NO抑制剂及释放剂处理对细胞死亡的影响 | 第62-64页 |
| 2．3 讨论 | 第64-68页 |
| 2．3．1 水稻与白叶枯病菌互作中活性氧的产生及在HR细胞死亡中的作用 | 第64-66页 |
| 2．3．2 水稻与白叶枯病菌互作中NO的产生及在HR细胞死亡中的作用 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 第三章 水稻-白叶枯病菌互作中活性氧产生的酶机理 | 第71-86页 |
| 3．1 材料与方法 | 第71-74页 |
| 3．1．1 供试水稻悬浮细胞 | 第71页 |
| 3．1．2 供试病原菌 | 第71页 |
| 3．1．3 水稻悬浮细胞接种白叶枯病菌 | 第71-72页 |
| 3．1．4 细胞壁上氧化酶的提取和活性测定 | 第72页 |
| 3．1．4．1 细胞壁的提取 | 第72页 |
| 3．1．4．2 二胺氧化酶（DAO）的活性测定 | 第72页 |
| 3．1．4．3 细胞壁过氧化物酶（CW-POD）的活性测定 | 第72页 |
| 3．1．4．4 细胞壁NADH过氧化物酶（NADH-POD）的活性测定 | 第72页 |
| 3．1．4．5 草酸氧化酶的活性测定 | 第72页 |
| 3．1．5 NADPH氧化酶的提取矛和活性测定 | 第72-73页 |
| 3．1．6 黄嘌呤氧化酶（XO）的活性测定 | 第73页 |
| 3．1．7 脂氧合酶（LOX）的活性测定 | 第73页 |
| 3．1．8 酶液中蛋白质浓度的测定 | 第73页 |
| 3．1．9 抑制剂处理对活性氧产生和细胞死亡的影响 | 第73-74页 |
| 3．2 结果与讨论 | 第74-81页 |
| 3．2．1 接种后DAO活性的变化 | 第74-75页 |
| 3．2．2 接种后CW-POD活性的变化 | 第75-76页 |
| 3．2．3 接种后细胞壁NADH-POD活性的变化 | 第76-77页 |
| 3．2．4 接种后草酸氧化酶活性的变化 | 第77页 |
| 3．2．5 接种后NADPH氧化酶活性的变化 | 第77-78页 |
| 3．2．6 接种后XO活性的变化 | 第78-79页 |
| 3．2．7 接种后LOX活性的变化 | 第79-80页 |
| 3．2．8 抑制剂处理后对活性氧及细胞死亡的影响 | 第80-81页 |
| 3．3 讨论 | 第81-84页 |
| 参考文献 | 第84-86页 |
| 第四章 线粒体活性氧产生在水稻过敏性细胞死亡中的作用 | 第86-97页 |
| 4．1 材料与方法 | 第86-87页 |
| 4．1．1 供试水稻悬浮细胞 | 第86页 |
| 4．1．2 供试病原菌 | 第86-87页 |
| 4．1．3 水稻悬浮细胞接种白叶枯病菌 | 第87页 |
| 4．1．4 接种后细胞内H_2O_2的测定 | 第87页 |
| 4．1．5 Mn-SOD的活性测定 | 第87页 |
| 4．1．6 抑制剂处理对活性氧的产生和细胞死亡的影响 | 第87页 |
| 4．2 结果与分析 | 第87-93页 |
| 4．2．1 接种后细胞内H_2O_2产生的变化 | 第87-88页 |
| 4．2．2 接种后Mn-SOD活性的变化 | 第88页 |
| 4．2．3 呼吸链抑制剂处理对互作中细胞内H_2O_2产生及细胞死亡的影响 | 第88-90页 |
| 4．2．4 活性氧清除剂处理对呼吸链抑制剂诱导H_2O_产生及细胞死亡的影响 | 第90-93页 |
| 4．3 讨论 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-97页 |
| 第五章 水稻的gp91~（Phox）同源基因OsrbohB的克隆及鉴定 | 第97-111页 |
| 5．1 材料与方法 | 第98-100页 |
| 5．1．1 供试水稻悬浮细胞 | 第98页 |
| 5．1．2 供试病原菌 | 第98页 |
| 5．1．3 水稻悬浮细胞接种白叶枯病菌 | 第98页 |
| 5．1．4 总RNA抽提 | 第98页 |
| 5．1．5 扩增全长cDNA策略 | 第98-99页 |
| 5．1．6 DNA测序及序列分析 | 第99页 |
| 5．1．7 基因表达的RT-PCR分析 | 第99-100页 |
| 5．2 结果与分析 | 第100-107页 |
| 5．2．1 一个新的水稻gp91~（phox）同源基因OsrbohB的克隆 | 第100-104页 |
| 5．2．2 OsrbohB在水稻悬浮细胞及与白叶枯病菌互作中的表达 | 第104-107页 |
| 5．3 讨论 | 第107-109页 |
| 参考文献 | 第109-111页 |
| 第六章 核酸酶活性的变化与水稻过敏性细胞死亡的关系 | 第111-120页 |
| 6．1 材料与方法 | 第111-113页 |
| 6．1．1 供试水稻悬浮细胞 | 第111页 |
| 6．1．2 供试病原菌 | 第111页 |
| 6．1．3 水稻悬浮细胞接种白叶枯病菌 | 第111-112页 |
| 6．1．4 DNA提取和分析 | 第112页 |
| 6．1．5 单链核酸酶和双链核酸酶的提取及活性测定 | 第112页 |
| 6．1．6 清除NO和活性氧后对核酸酶活性以及DNA降解的影响 | 第112-113页 |
| 6．2 结果与分析 | 第113-117页 |
| 6．2．1 接种后水稻细胞中DNA的变化 | 第113-114页 |
| 6．2．2 接种后水稻细胞核酸酶活性的变化 | 第114页 |
| 6．2．3 互作中NO和活性氧等产生对核酸酶活性及DNA降解的影响 | 第114-117页 |
| 6．3 讨论 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-120页 |
| 第七章 细胞凋亡相关的某些遗传因子在水稻过敏性细胞死亡中的作用 | 第120-129页 |
| 7．1 材料与方法 | 第120-121页 |
| 7．1．1 供试水稻悬浮细胞 | 第120页 |
| 7．1．2 供试病原菌 | 第120页 |
| 7．1．3 水稻悬浮细胞接种白叶枯病菌 | 第120-121页 |
| 7．1．4 总RNA抽提 | 第121页 |
| 7．1．5 基因表达的RT-PCR分析 | 第121页 |
| 7．1．6 细胞死亡测定 | 第121页 |
| 7．1．7 抑制剂处理 | 第121页 |
| 7．2 结果与分析 | 第121-124页 |
| 7．2．1 接种后BI-1基因和DAD1基因的表达变化 | 第121-122页 |
| 7．2．2 PARP在细胞死亡中的作用 | 第122页 |
| 7．2．3 蛋白酶在细胞死亡中的作用 | 第122-124页 |
| 7．3 讨论 | 第124-127页 |
| 参考文献 | 第127-129页 |
| 全文小结 | 第129-130页 |
| 附录A 本论文所用缩写词及中英文对照 | 第130-132页 |
| 附录B 主要化学试剂、分子生物学试剂及仪器 | 第132-134页 |
| 附录C 主要化学试剂及缓冲液配制 | 第134-135页 |
| 附录D 本论文所用培养基配方 | 第135-136页 |
