| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1. 前言 | 第13-24页 |
| ·氮信号 | 第13-16页 |
| ·低浓度氮素对侧根生长的影响及 ANR1 基因的作用 | 第16-19页 |
| ·高浓度硝酸盐对侧根发育的系统抑制 | 第19-20页 |
| ·外源L-谷氨酸对主根生长及根系分枝的影响 | 第20-22页 |
| ·L-谷氨酸的感知机制及离子型谷氨酸受体的作用 | 第22-23页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 2. 材料与方法 | 第24-37页 |
| ·实验材料 | 第24-25页 |
| ·植物材料与处理 | 第24页 |
| ·菌株与质粒 | 第24页 |
| ·酶及生化试剂 | 第24页 |
| ·PCR 引物 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-37页 |
| ·供氮形态与水平试验 | 第25页 |
| ·局部供氮试验 | 第25-26页 |
| ·植物材料总 RNA 的提取 | 第26页 |
| ·反转录cDNA 第一链的合成（用于3′RACE） | 第26-27页 |
| ·反转录cDNA 第一链的合成（用于5′RACE） | 第27页 |
| ·cDNA 全长基因序列的获得 | 第27-29页 |
| ·3′端基因片段的克隆 | 第27-28页 |
| ·5′RACE 获得5′端基因序列 | 第28-29页 |
| ·MhGLR3.6 全长基因的克隆 | 第29页 |
| ·DNA 片段与克隆载体的连接 | 第29页 |
| ·凝胶电泳中 DNA 片段的回收 | 第29-30页 |
| ·碱法小量质粒 DNA 的提取 | 第30页 |
| ·DNA 序列测定 | 第30页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第30-31页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第30-31页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的转化 | 第31页 |
| ·根癌农杆菌 LBA4404 感受态细胞的制备与转化 | 第31-32页 |
| ·感受态细胞的制备 | 第31-32页 |
| ·冻融法农杆菌转化 | 第32页 |
| ·基因组 DNA 提取（CTAB 法） | 第32-33页 |
| ·MhGLR3.6 反义表达载体的构建 | 第33-34页 |
| ·实时荧光定量 PCR | 第34-35页 |
| ·‘皇家嘎拉’苹果的转化 | 第35-37页 |
| ·组织培养所用培养基 | 第35页 |
| ·转化步骤 | 第35-37页 |
| 3. 结果与分析 | 第37-57页 |
| ·供应不同水平的NO_3~-与NH_4~+对平邑甜茶生长的影响 | 第37-40页 |
| ·生物量及冠根比 | 第37-38页 |
| ·主根生长 | 第38页 |
| ·侧根生长 | 第38-39页 |
| ·根系直径 | 第39-40页 |
| ·不同供氮形态对平邑甜茶生长的影响 | 第40页 |
| ·局部供氮对平邑甜茶侧根密度的影响 | 第40-41页 |
| ·谷氨酸对平邑甜茶根系生长的影响 | 第41-42页 |
| ·MhGLR3.6 3′基因片段的分离 | 第42-43页 |
| ·MhGLR3.6 5′片段的分离 | 第43页 |
| ·MhGLR3.6 编码基因的克隆 | 第43页 |
| ·MhGLR3.6 基因的序列分析 | 第43-55页 |
| ·基因的表达特性研究 | 第55页 |
| ·MhGLR3.6 在不同组织中的表达 | 第55页 |
| ·L-谷氨酸和IBA 对MhGLR3.6 表达的影响 | 第55页 |
| ·转基因植株的获得 | 第55-57页 |
| 4. 讨论 | 第57-61页 |
| ·不同供氮处理对平邑甜茶根系构型的影响 | 第57-59页 |
| ·平邑甜茶谷氨酸受体同源基因的克隆、表达及转化 | 第59-61页 |
| 5. 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 硕士在读期间形成的论文 | 第75页 |
