| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-15页 |
| 英文缩写词表 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-19页 |
| 第一章 IL18-EGF融合基因的构建和表达 | 第19-43页 |
| 1 材料和方法 | 第19-34页 |
| ·材料 | 第19-24页 |
| ·方法 | 第24-34页 |
| 2 结果 | 第34-40页 |
| ·人IL18 cDNA的克隆及其鉴定 | 第34-35页 |
| ·IL18-EGF融合基因构建 | 第35页 |
| ·IL18-EGF融合基因的克隆及其鉴定 | 第35-37页 |
| ·IL18-EGF融合蛋白和IL18成熟肽之间的柔性和亲水性分析 | 第37-39页 |
| ·原核表达载体pET32a-IL18-EGF的构建与鉴定 | 第39-40页 |
| ·IL18-EGF在大肠杆菌中的表达和Western-blot分析 | 第40页 |
| 3 讨论 | 第40-42页 |
| ·融合基因构建中Linker的选择 | 第40-41页 |
| ·原核表达载体的选择 | 第41页 |
| ·重组蛋白的融合表达策略 | 第41-42页 |
| 4 小结 | 第42-43页 |
| 第二章 IL18-EGF融合蛋白的表达、纯化及复性研究 | 第43-56页 |
| 1 材料与方法 | 第43-49页 |
| ·材料 | 第43-45页 |
| ·方法 | 第45-49页 |
| 2 结果 | 第49-52页 |
| ·发酵培养 | 第49页 |
| ·包涵体的初步纯化 | 第49-50页 |
| ·包涵体的柱上复性和纯化 | 第50-51页 |
| ·R-PCR检测IL18-EGF融合蛋白诱导PBMC IFN-γ基因表达 | 第51-52页 |
| 3 讨论 | 第52-55页 |
| ·IL18-EGF融合蛋白的活性检测 | 第52页 |
| ·包涵体蛋白的提取 | 第52-53页 |
| ·IL18-EGF融合蛋白的变性和复性 | 第53-55页 |
| 4 小结 | 第55-56页 |
| 第三章 IL1 8-EGF融合蛋白的体内和体外抗肿瘤活性研究 | 第56-78页 |
| 1 材料和方法 | 第56-65页 |
| ·材料 | 第56-58页 |
| ·方法 | 第58-65页 |
| 2 结果 | 第65-74页 |
| ·人IL18-EGF体内抗肿瘤作用 | 第65-74页 |
| 3 讨论 | 第74-77页 |
| ·IL18-EGF的靶向作用与抗肿瘤活性 | 第74-75页 |
| ·IL18-EGF的体内和体外抗肿瘤治疗的可行性 | 第75-76页 |
| ·IL18-EGF抗肿瘤效应的可能机制 | 第76-77页 |
| 4 小结 | 第77-78页 |
| ·IL18-EGF融合蛋白的体内试验表明: | 第77页 |
| ·IL18-EGF融合蛋白的体外试验表明: | 第77-78页 |
| 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-85页 |
| 综述 | 第85-100页 |
| 参考文献 | 第96-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第101页 |
