| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-22页 |
| 研究现状、成果 | 第17-20页 |
| 研究目的、方法 | 第20-22页 |
| 一、脊髓损伤后肌萎缩的蛋白质组研究 | 第22-43页 |
| 1.1 对象和方法 | 第23-31页 |
| 1.1.0 实验对象 | 第23页 |
| 1.1.1 实验器材 | 第23-24页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第24页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第24-31页 |
| 1.1.3.1 大鼠脊髓挫伤模型制备 | 第24-25页 |
| 1.1.3.2 大鼠后肢BBB功能学评分 | 第25-27页 |
| 1.1.3.3 大鼠比目鱼肌H&E染色及肌纤维直径测定 | 第27-28页 |
| 1.1.3.4 蛋白质2D电泳 | 第28-29页 |
| 1.1.3.5 蛋白质质谱检测 | 第29-31页 |
| 1.1.3.6 统计学分析 | 第31页 |
| 1.2 结果 | 第31-37页 |
| 1.2.1 大鼠脊髓损伤模型制备效果 | 第31页 |
| 1.2.2 大鼠后肢BBB功能学评分 | 第31-32页 |
| 1.2.3 大鼠比目鱼肌H&E染色及肌纤维直径测定 | 第32页 |
| 1.2.4 蛋白质2D电泳 | 第32-33页 |
| 1.2.5 蛋白质质谱检测 | 第33-37页 |
| 1.3 讨论 | 第37-41页 |
| 1.3.1 脊髓损伤后肌萎缩特点 | 第37-38页 |
| 1.3.2 脊髓损伤后肌萎缩重要蛋白变化 | 第38-41页 |
| 1.3.3 脊髓损伤后肌萎缩与功能恢复的关系 | 第41页 |
| 1.4 小结 | 第41-43页 |
| 二、雪旺细胞外泌体抑制肌萎缩的体外研究 | 第43-61页 |
| 2.1 对象和方法 | 第43-50页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第43-44页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第44页 |
| 2.1.3 实验器械 | 第44页 |
| 2.1.4 实验试剂 | 第44-45页 |
| 2.1.5 实验方法 | 第45-50页 |
| 2.1.5.1 雪旺细胞分离、培养、鉴定 | 第45-47页 |
| 2.1.5.2 雪旺细胞外泌体提取、鉴定 | 第47-49页 |
| 2.1.5.3 雪旺细胞外泌体L6细胞内在化实验 | 第49页 |
| 2.1.5.4 体外L6肌管萎缩实验及共培养实验 | 第49-50页 |
| 2.1.5.5 荧光实时定量PCR(Real-time RT-PCR) | 第50页 |
| 2.1.5.6 统计学分析 | 第50页 |
| 2.2 结果 | 第50-55页 |
| 2.2.1 雪旺细胞分离、培养、鉴定 | 第50-51页 |
| 2.2.2 雪旺细胞外泌体提取、鉴定 | 第51-52页 |
| 2.2.3 雪旺细胞外泌体L6细胞内在化实验 | 第52-53页 |
| 2.2.4 体外L6肌管萎缩实验及共培养实验 | 第53-54页 |
| 2.2.5 肌萎缩相关基因表达情况 | 第54-55页 |
| 2.3 讨论 | 第55-60页 |
| 2.3.1 雪旺细胞的作用机制 | 第55-57页 |
| 2.3.2 雪旺细胞外泌体的潜在修复机制 | 第57-58页 |
| 2.3.3 细胞移植修复肌萎缩 | 第58-59页 |
| 2.3.4 肌萎缩相关基因 | 第59-60页 |
| 2.4 小结 | 第60-61页 |
| 三、雪旺细胞外泌体移植修复脊髓损伤后肌萎缩的体内研究 | 第61-86页 |
| 3.1 对象和方法 | 第62-71页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第62页 |
| 3.1.2 实验设备及耗材 | 第62-64页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第64-71页 |
| 3.1.3.1 大鼠脊髓挫伤模型制备 | 第64-65页 |
| 3.1.3.2 雪旺细胞外泌体局部注射 | 第65页 |
| 3.1.3.3 大鼠后肢肌肉形态学分析 | 第65-67页 |
| 3.1.3.4 肌肉再生能力测定 | 第67页 |
| 3.1.3.5 肌萎缩相关基因表达测定 | 第67页 |
| 3.1.3.6 细胞组织凋亡情况检测 | 第67-69页 |
| 3.1.3.7 脊髓损伤后快慢肌转化情况 | 第69-70页 |
| 3.1.3.8 大鼠后肢功能学评估 | 第70页 |
| 3.1.3.9 脊髓损伤后脊髓胶质瘢痕分析 | 第70页 |
| 3.1.3.10 脊髓损伤后BDA示踪分析 | 第70-71页 |
| 3.2 结果 | 第71-80页 |
| 3.2.1 重度大鼠脊髓挫伤模型制备 | 第71页 |
| 3.2.2 雪旺细胞外泌体局部注射 | 第71页 |
| 3.2.3 大鼠后肢肌肉形态学分析 | 第71-74页 |
| 3.2.4 肌肉再生能力测定 | 第74-75页 |
| 3.2.5 肌萎缩相关基因表达测定 | 第75-76页 |
| 3.2.6 细胞组织凋亡情况检测 | 第76-77页 |
| 3.2.7 脊髓损伤后快慢肌转化情况 | 第77页 |
| 3.2.8 大鼠后肢功能学评估 | 第77-78页 |
| 3.2.9 脊髓损伤后脊髓损伤面积、胶质瘢痕及轴索再生情况分析 | 第78-80页 |
| 3.3 讨论 | 第80-85页 |
| 3.3.1 Pax7和MyoD1在肌肉再生中的作用 | 第80-81页 |
| 3.3.2 FoxO转录因子在肌萎缩中的作用 | 第81-82页 |
| 3.3.3 凋亡途径在肌萎缩中的作用 | 第82页 |
| 3.3.4 快慢肌转换在脊髓损伤后肌萎缩中的作用 | 第82-83页 |
| 3.3.5 脊髓损伤的运动功能评估 | 第83-85页 |
| 3.4 小结 | 第85-86页 |
| 四、雪旺细胞外泌体修复脊髓损伤后肌萎缩的机制探索 | 第86-99页 |
| 4.1 对象和方法 | 第86-90页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第86页 |
| 4.1.2 实验设备及耗材 | 第86-88页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第88-90页 |
| 4.1.3.1 大鼠脊髓挫伤模型与大鼠坐骨神经损伤模型制备 | 第88-89页 |
| 4.1.3.2 测定miR-206含量变化 | 第89-90页 |
| 4.1.3.3 信号通路Akt/mTOR激活分析 | 第90页 |
| 4.2 结果 | 第90-93页 |
| 4.2.1 大鼠脊髓挫伤与大鼠坐骨神经损伤后miR-206表达差异 | 第90-91页 |
| 4.2.2 雪旺细胞外泌体对脊髓损伤后肌肉miR-206的作用 | 第91-92页 |
| 4.2.3 雪旺细胞外泌体通过激活Akt/mTOR信号通路发挥作用 | 第92-93页 |
| 4.3 讨论 | 第93-97页 |
| 4.3.1 miR-206在肌萎缩中的作用 | 第93-96页 |
| 4.3.2 Akt/mTOR信号通路在肌萎缩中的作用 | 第96-97页 |
| 4.3.3 microRNA和Akt/mTOR信号通路在肌萎缩中的共同作用 | 第97页 |
| 4.4 小结 | 第97-99页 |
| 全文结论 | 第99-100页 |
| 论文创新点 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-124页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第124-127页 |
| 综述 脊髓损伤后肌萎缩的研究进展 | 第127-147页 |
| 1.脊髓损伤肌萎缩的动物模型构建 | 第127-128页 |
| 2.脊髓损伤后肌萎缩的肌肉表型变化 | 第128-130页 |
| 3.脊髓损伤后肌纤维线粒体功能 | 第130-131页 |
| 4.脊髓损伤后肌纤维自噬情况 | 第131-132页 |
| 5.脊髓损伤后肌纤维氧化应激变化 | 第132-133页 |
| 6.脊髓损伤后参与肌萎缩的microRNA变化 | 第133-134页 |
| 7.脊髓损伤后参与肌萎缩的其他相关分子和信号通路变化 | 第134页 |
| 8.小结 | 第134-135页 |
| 综述参考文献 | 第135-147页 |
| 致谢 | 第147-148页 |
| 个人简历 | 第148页 |
