缩略语表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-12页 |
英文摘要 | 第12-16页 |
前言 | 第17-19页 |
文献回顾 | 第19-32页 |
第一部分 单纯多孔TI6AL4V支架及生物活性镁涂层修饰多孔TI6AL4V支架的制备及支架特性的研究 | 第32-42页 |
1 材料 | 第33-34页 |
1.1 实验材料及试剂 | 第33页 |
1.2 实验仪器 | 第33-34页 |
2 方法 | 第34-36页 |
2.1 多孔钛合金材料的设计与制造 | 第34页 |
2.2 多孔Ti6Al4V支架材料表面生物活性镁涂层的制备 | 第34-35页 |
2.3 多孔Ti6Al4V支架材料表面生物活性镁涂层修饰前后表面扫描电镜及元素分析 | 第35页 |
2.4 多孔Ti6Al4V支架材料浸提液的制备 | 第35页 |
2.5 多孔Ti6Al4V生物活性镁涂层支架材料降解情况的分析 | 第35-36页 |
2.6 统计分析 | 第36页 |
3 结果 | 第36-38页 |
3.1 扫描电镜及元素分析结果 | 第36-37页 |
3.2 多孔钛合金生物活性镁涂层支架材料降解情况的分析 | 第37-38页 |
4 讨论 | 第38-42页 |
第二部分 单纯多孔TI6AL4V支架及生物活性镁涂层修饰多孔TI6AL4V支架的体外促进成骨和血管化研究 | 第42-69页 |
1 材料 | 第42-44页 |
1.1 实验材料及试剂 | 第42-43页 |
1.2 实验仪器 | 第43-44页 |
2 方法 | 第44-52页 |
2.1 支架材料浸提液的制备 | 第44页 |
2.2 MC3T3-E1细胞和HUVEC细胞培养及传代 | 第44页 |
2.3 MC3T3-E1细胞和HUVEC细胞增殖检测 | 第44-45页 |
2.4 MC3T3-E1细胞和HUVEC细胞活性检测 | 第45-46页 |
2.5 MC3T3-E1细胞和HUVEC细胞形态检测 | 第46-47页 |
2.6 MC3T3-E1细胞ALP活性细胞外基质矿化活性检测 | 第47-48页 |
2.7 HUVEC细胞迁移、侵袭能力检测 | 第48-49页 |
2.8 HUVEC细胞小管形成能力检测 | 第49-50页 |
2.9 实时定量PCR检测 | 第50-52页 |
2.10 统计分析 | 第52页 |
3 结果 | 第52-64页 |
3.1 MC3T3-E1细胞和HUVEC细胞增殖 | 第52-53页 |
3.2 MC3T3-E1细胞和HUVEC细胞活性 | 第53-55页 |
3.3 MC3T3-E1细胞和HUVEC细胞形态检测 | 第55-58页 |
3.4 MC3T3-E1细胞ALP活性细胞外基质矿化活性检测 | 第58-59页 |
3.5 HUVEC细胞迁移、侵袭能力检测 | 第59-61页 |
3.6 HUVEC细胞小管形成能力检测 | 第61-62页 |
3.7 实时定量PCR检测 | 第62-64页 |
4 讨论 | 第64-69页 |
第三部分 单纯多孔TI6AL4V支架及生物活性镁涂层修饰多孔TI6AL4V支架的体内促进成骨和血管化研究 | 第69-86页 |
1 材料 | 第69-71页 |
1.1 实验材料及试剂 | 第69-70页 |
1.2 实验仪器 | 第70页 |
1.3 实验动物 | 第70-71页 |
2 方法 | 第71-76页 |
2.1 动物手术 | 第71-72页 |
2.2 新生骨组织的荧光三标 | 第72-73页 |
2.3 实验兔的微血管灌注造影 | 第73-74页 |
2.4 标本的取材和固定 | 第74页 |
2.5 Micro-CT扫描 | 第74-75页 |
2.6 标本的固定和包埋 | 第75页 |
2.7 标本的硬组织切片制备 | 第75页 |
2.8 组织切片病理学染色 | 第75-76页 |
2.9 图像采集与分析 | 第76页 |
2.10 统计学分析 | 第76页 |
3 结果 | 第76-81页 |
3.1 实验动物术后情况 | 第76页 |
3.2 骨组织荧光三标检测 | 第76-77页 |
3.3 Micro-CT检测 | 第77-78页 |
3.4 微血管灌注造影检测 | 第78-80页 |
3.5 组织病理学染色检测 | 第80-81页 |
4 讨论 | 第81-86页 |
小结 | 第86-88页 |
参考文献 | 第88-101页 |
个人简历和研究成果 | 第101-103页 |
致谢 | 第103页 |