| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词 | 第20-22页 |
| 第一章 文献综述 | 第22-51页 |
| 1.1 设施土壤次生盐渍化 | 第22-26页 |
| 1.1.1 土壤次生盐渍化特点 | 第22-23页 |
| 1.1.2 设施土壤次生盐渍化形成的原因 | 第23-25页 |
| 1.1.2.1 不合理施肥 | 第23-24页 |
| 1.1.2.2 不合理灌溉 | 第24页 |
| 1.1.2.3 保护地特殊环境 | 第24-25页 |
| 1.1.3 设施土壤次生盐渍化的危害 | 第25-26页 |
| 1.1.3.1 土壤次生盐渍化对作物土壤的危害 | 第25页 |
| 1.1.3.2 土壤次生盐渍化对作物的影响 | 第25-26页 |
| 1.2 NO_3~-胁迫对设施蔬菜生长的影响 | 第26-28页 |
| 1.2.1 NO_3~-胁迫对对植物生理生化的影响 | 第26-27页 |
| 1.2.2 对植物光合碳代谢的影响 | 第27-28页 |
| 1.3 硫化氢的研究进展 | 第28-36页 |
| 1.3.1 H_2S在植物发育中的作用 | 第28-32页 |
| 1.3.1.1 H_2S与种子萌发 | 第28页 |
| 1.3.1.2 H_2S与根发育 | 第28-29页 |
| 1.3.1.3 H_2S与气孔运动 | 第29-30页 |
| 1.3.1.4 H_2S与光合作用 | 第30页 |
| 1.3.1.5 延缓衰老及延长花期 | 第30-31页 |
| 1.3.1.6 参与生长发育 | 第31页 |
| 1.3.1.7 调节硫代谢 | 第31-32页 |
| 1.3.2 H_2S在植物逆境生理中的作用 | 第32-36页 |
| 1.3.2.1 H_2S与水分胁迫 | 第32-33页 |
| 1.3.2.2 H_2S与盐胁迫 | 第33-34页 |
| 1.3.2.3 H_2S与高温胁迫 | 第34页 |
| 1.3.2.4 H_2S与离子胁迫 | 第34-36页 |
| 1.3.2.5 H_2S与其他胁迫 | 第36页 |
| 1.4 MAPK的研究进展 | 第36-49页 |
| 1.4.1 植物中MAPK级联的组成与分类 | 第37-39页 |
| 1.4.2 MAPK在植物发育中的作用 | 第39-41页 |
| 1.4.3 MAPK在植物在植物逆境生理中的作用 | 第41-46页 |
| 1.4.4 MAPK与其他信号分子的互作 | 第46-48页 |
| 1.4.5 MAPK级联反应的调控机制 | 第48-49页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第49-51页 |
| 第二章 外源NaHS促进番茄幼苗的生长和缓解NO_3~-胁迫 | 第51-82页 |
| 2.1 材料与方法 | 第52-60页 |
| 2.1.1 材料和试剂 | 第52页 |
| 2.1.2 幼苗培养及处理 | 第52-53页 |
| 2.1.3 测定项目及方法 | 第53-56页 |
| 2.1.3.1 株高、根长、鲜重、干重的测定 | 第53页 |
| 2.1.3.2 叶绿素含量的测定 | 第53页 |
| 2.1.3.3 光合参数的测定 | 第53-54页 |
| 2.1.3.4 MDA含量和H_2O_2含量的测定 | 第54页 |
| 2.1.3.5 抗氧化酶活性的测定 | 第54页 |
| 2.1.3.6 AsA含量和GSH含量的测定 | 第54-55页 |
| 2.1.3.7 氮代谢关键酶活性的测定 | 第55页 |
| 2.1.3.8 L-半胱氨酸脱巯基酶(AtLCD)活性和内源H_2S含量的测定 | 第55-56页 |
| 2.1.3.9 气孔开度的测定 | 第56页 |
| 2.1.4 SlMAPK基因克隆的材料与方法 | 第56-60页 |
| 2.1.4.1 菌种和质粒 | 第56页 |
| 2.1.4.2 酶与试剂 | 第56-57页 |
| 2.1.4.3 植物总RNA提取 | 第57页 |
| 2.1.4.4 植物总RNA纯化 | 第57页 |
| 2.1.4.5 引物合成及PCR扩增SlMAPK基因 | 第57-59页 |
| 2.1.4.6 DNA片段回收 | 第59页 |
| 2.1.4.7 RCR产物的TA克隆 | 第59-60页 |
| 2.1.4.8 植物真核表达载体和原核表达载体的构建 | 第60页 |
| 2.1.5 数据处理与分析 | 第60页 |
| 2.2 结果与分析 | 第60-78页 |
| 2.2.1 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗生长和生理生化特性的影响 | 第60-67页 |
| 2.2.1.1 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗生长的影响 | 第60-62页 |
| 2.2.1.2 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗叶片叶绿素含量的影响 | 第62-63页 |
| 2.2.1.3 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗叶片光合特性的影响 | 第63-64页 |
| 2.2.1.4 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗气孔开度的影响 | 第64页 |
| 2.2.1.5 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗氮代谢关键酶活性及NO_3~-含量的影响 | 第64-65页 |
| 2.2.1.6 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗对抗氧物质AsA和GSH含量的影响 | 第65-66页 |
| 2.2.1.7 外源施加不同浓度NaHS对番茄幼苗L-半胱氨酸脱巯基酶活性及内源H_2S含量的影响 | 第66-67页 |
| 2.2.2 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗生理生化特性的影响 | 第67-74页 |
| 2.2.2.1 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗生长的影响 | 第67-68页 |
| 2.2.2.2 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗叶片叶绿素含量的影响 | 第68-69页 |
| 2.2.2.3 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗叶片光合特性的影响 | 第69-70页 |
| 2.2.2.4 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗膜脂过氧化水平和H_2O_2含量的影响 | 第70-71页 |
| 2.2.2.5 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗抗氧化物酶活性和抗氧化物质含量的影响 | 第71-72页 |
| 2.2.2.6 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗氮代谢关键酶活性的影响 | 第72-73页 |
| 2.2.2.7 外源施加NaHS不同时间对NO_3~-胁迫下番茄幼苗L-半胱氨酸脱巯基酶活性及内源H_2S含量的影响 | 第73-74页 |
| 2.2.3 外源施加NaHS对番茄MAPK基因家族的表达的影响 | 第74-75页 |
| 2.2.4 番茄MAPK基因的克隆及载体构建 | 第75-78页 |
| 2.2.4.1 番茄MAPK基因的克隆 | 第75-76页 |
| 2.2.4.2 植物表达载体和原核表达载体的构建 | 第76-78页 |
| 2.3 讨论 | 第78-82页 |
| 第三章 MAPK在H_2S缓解NO_3~-胁迫中的作用 | 第82-100页 |
| 3.1 材料与方法 | 第83-86页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第83-84页 |
| 3.1.2 幼苗培养及处理 | 第84-85页 |
| 3.1.3 测定项目及方法 | 第85-86页 |
| 3.1.3.1 MDA含量和H_2O_2含量的测定 | 第85页 |
| 3.1.3.2 抗氧化酶活性的测定 | 第85页 |
| 3.1.3.3 AsA含量和GSH含量的测定 | 第85页 |
| 3.1.3.4 L-半胱氨酸脱巯基酶(AtLCD)活性和内源H_2S含量的测定 | 第85-86页 |
| 3.1.3.5 GR、DHAR、MDHAR活性的测定 | 第86页 |
| 3.1.4 数据处理与分析 | 第86页 |
| 3.2 结果与分析 | 第86-97页 |
| 3.2.1 MAPK参与番茄中H_2S对NO_3~-胁迫诱导氧化损伤的缓解作用 | 第86-90页 |
| 3.2.1.1 MAPK抑制剂对H_2S缓解NO_3~-胁迫过程中H_2O_2和MDA含量的影响 | 第86-87页 |
| 3.2.1.2 MAPK抑制剂对H_2S缓解NO_3~-胁迫过程中抗氧化酶活性的影响 | 第87-88页 |
| 3.2.1.3 MAPK抑制剂对H_2S缓解NO_3~-胁迫过程中AsA和GSH含量的影响 | 第88-89页 |
| 3.2.1.4 MAPK抑制剂对H_2S缓解NO_3~-胁迫过程中GR、DHAR和MDHAR的影响 | 第89-90页 |
| 3.2.1.5 MAPK抑制剂对H_2S缓解NO_3~-胁迫过程中L-半胱氨酸脱巯基酶活性及内源H_2S含量的影响 | 第90页 |
| 3.2.2 NO_3~-胁迫下CsNMAPK过表达转基因烟草中H_2S的作用分析 | 第90-97页 |
| 3.2.2.1 外源H_2S供体、清除剂、抑制剂和MAPK抑制剂对硝酸盐胁迫下CsNMAPK过表达转基因烟草中H_2O_2及MDA含量的影响 | 第90-92页 |
| 3.2.2.2 外源H_2S供体、清除剂、抑制剂和MAPK抑制剂对硝酸盐胁迫下CsNMAPK过表达转基因烟草中抗氧化酶活性的影响 | 第92-94页 |
| 3.2.2.3 外源H_2S供体、清除剂、抑制剂和MAPK抑制剂对硝酸盐胁迫下CsNMAPK过表达转基因烟草中抗氧化物质含量影响 | 第94-95页 |
| 3.2.2.4 外源H_2S供体、清除剂、抑制剂和MAPK抑制剂对硝酸盐胁迫下CsNMAPK过表达转基因烟草中GR、DHAR、MDHAR活性的影响 | 第95-96页 |
| 3.2.2.5 外源H_2S供体、清除剂、抑制剂和MAPK抑制剂对硝酸盐胁迫下CsNMAPK过表达转基因烟草中AtLCD活性及H_2S含量的影响 | 第96-97页 |
| 3.3 讨论 | 第97-100页 |
| 第四章 L-/D-型半胱氨酸脱巯基酶基因的克隆及过表达转基因烟草的获得 | 第100-108页 |
| 4.1 材料和方法 | 第100-103页 |
| 4.1.1 菌种和质粒 | 第100页 |
| 4.1.2 酶与试剂 | 第100-101页 |
| 4.1.3 植物材料培养 | 第101页 |
| 4.1.4 植物总RNA提取 | 第101页 |
| 4.1.5 植物总RNA纯化 | 第101页 |
| 4.1.6 引物合成及PCR扩增AtLCD 和 SlDCD基因 | 第101页 |
| 4.1.7 DNA片段回收 | 第101页 |
| 4.1.8 PCR产物的TA克隆 | 第101-102页 |
| 4.1.9 植物表达载体的构建 | 第102页 |
| 4.1.10 农杆菌侵染法转化烟草 | 第102-103页 |
| 4.1.11 转基因烟草基因组PCR、RT-PCR检测 | 第103页 |
| 4.2 结果与分析 | 第103-107页 |
| 4.2.1 巢式PCR扩增AtLCD及SlDCD基因 | 第103-104页 |
| 4.2.2 pRI101-AtLCD及pRI101-SlDCD植物表达载体的构建 | 第104-105页 |
| 4.2.3 转基因烟草的基因组PCR检测 | 第105-106页 |
| 4.2.4 SlDCD过表达转基因烟草的生长情况 | 第106-107页 |
| 4.3 讨论 | 第107-108页 |
| 第五章 总结和展望 | 第108-110页 |
| 5.1 总结 | 第108-109页 |
| 5.2 展望 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-137页 |
| 附录攻读硕士期间发表论文 | 第137页 |
