中文摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
第一章 前言 | 第10-13页 |
第二章 实验材料与方法 | 第13-32页 |
2.1 实验材料 | 第13-21页 |
2.1.1 细胞系 | 第13页 |
2.1.2 主要抗体 | 第13-14页 |
2.1.3 质粒 | 第14页 |
2.1.4 常用生化试剂 | 第14-15页 |
2.1.5 主要试剂配方 | 第15-19页 |
2.1.6 Western Blotting相关试剂 | 第19-20页 |
2.1.7 蛋白纯化试剂 | 第20页 |
2.1.8 RNA提取试剂 | 第20页 |
2.1.9 逆转录和q-PCR试剂 | 第20页 |
2.1.10 转录活性检测试剂 | 第20页 |
2.1.11 细胞凋亡检测试剂 | 第20页 |
2.1.12 主要仪器 | 第20-21页 |
2.2 主要实验方法 | 第21-32页 |
2.2.1 质粒构建 | 第21-22页 |
2.2.2 质谱分析 | 第22页 |
2.2.3 细胞培养 | 第22-23页 |
2.2.4 细胞转染 | 第23-24页 |
2.2.5 Western Blotting | 第24-25页 |
2.2.6 Strep-tactin树脂纯化蛋白 | 第25-26页 |
2.2.7 Protein A/G琼脂糖和抗体纯化蛋白 | 第26-27页 |
2.2.8 Cycloheximide(CHX)实验 | 第27页 |
2.2.9 实时定量q-PCR实验 | 第27-29页 |
2.2.10 双荧光素酶报告基因实验 | 第29-30页 |
2.2.11 细胞凋亡实验 | 第30-31页 |
2.2.12 免疫荧光共定位实验 | 第31页 |
2.2.13 实验数据处理与分析 | 第31-32页 |
第三章 实验结果与讨论 | 第32-56页 |
3.1 蛋白质组学鉴定Cereblon(CRBN)下调c-Jun蛋白水平 | 第32-33页 |
3.2 生化验证CRBN下调c-Jun蛋白 | 第33-35页 |
3.3 c-Jun与CRBN相互作用并共定位 | 第35-37页 |
3.4 CRBN促进c-Jun降解 | 第37-39页 |
3.5 CRBN促进c-Jun泛素化降解 | 第39-40页 |
3.6 CRBN促进c-JunK48位多聚泛素链的形成 | 第40-42页 |
3.7 Cullin 4A下调c-Jun蛋白表达水平 | 第42-43页 |
3.8 CRBN抑制AP-1的转录活性 | 第43-44页 |
3.9 CRBN调控LPS诱导的炎症反应 | 第44-46页 |
3.10 CRBN通过调控c-Jun蛋白表达来抑制炎症反应 | 第46-50页 |
3.11 CRBN抑制LPS诱导的THP-1细胞凋亡 | 第50-52页 |
3.12 CRBN通过抑制c-Jun/AP-1活性来抑制LPS诱导的THP-1细胞凋亡 | 第52-56页 |
第四章 结论 | 第56-57页 |
第五章 讨论 | 第57-60页 |
参考文献 | 第60-67页 |
综述:c-Jun/AP-1原癌基因蛋白/活化蛋白1的功能及研究进展 | 第67-75页 |
参考文献 | 第71-75页 |
中英文缩略词对照表 | 第75-76页 |
攻读硕士学位期间投递的论文 | 第76-77页 |
致谢 | 第77-78页 |