| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 主要缩略语英文索引 | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-15页 |
| 第2章 实验材料及实验方法 | 第15-25页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第15-16页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第15页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-25页 |
| 2.2.1 细胞培养及处理 | 第16-17页 |
| 2.2.2 MTT法细胞活性测定 | 第17-18页 |
| 2.2.3 MEG3转染：参考试剂盒上的试剂说明书进行 | 第18页 |
| 2.2.4 萤光素酶报告分析 | 第18页 |
| 2.2.5 miRs芯片分析 | 第18页 |
| 2.2.6 小干扰RNA转染 | 第18-19页 |
| 2.2.7 实时荧光定量PCR | 第19-20页 |
| 2.2.8 miR-125a-5p表达分析 | 第20-21页 |
| 2.2.9 蛋白质免疫印迹 | 第21-23页 |
| 2.2.10 细胞免疫荧光 | 第23-24页 |
| 2.2.11 统计学分析结果 | 第24-25页 |
| 第3章 实验结果 | 第25-41页 |
| 3.1 hsa-miR-125a-5p对TET2靶向性的生物信息学分析及验证 | 第25-32页 |
| 3.2 MEG3与miR-125a-5p结合的生物信息学分析及荧光报告素酶验证 | 第32-34页 |
| 3.3 HepG2细胞MEG3表达分析 | 第34-35页 |
| 3.4 MEG3对HepG2细胞apo(a)表达水平的影响 | 第35-36页 |
| 3.5 MEG3抑制HepG2细胞apo(a)表达的机制 | 第36-41页 |
| 第4章 讨论 | 第41-45页 |
| 4.1 MEG3的病理生理学意义及作用机制 | 第41页 |
| 4.2 TET2酶在动脉粥样硬化中的作用 | 第41-45页 |
| 第5章 结论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 综述 | 第55-71页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 攻读学位期间科研成果 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
