| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 固有无序蛋白质（IDPs） | 第11-14页 |
| 1.1.1 IDPs的组成特点 | 第11-12页 |
| 1.1.2 IDPs的结构特征 | 第12页 |
| 1.1.3 IDPs的预测 | 第12页 |
| 1.1.4 IDPs的类别 | 第12-13页 |
| 1.1.5 IDPs的分子识别域 | 第13页 |
| 1.1.6 IDPs与分子互作方式 | 第13-14页 |
| 1.1.7 IDPs的分布 | 第14页 |
| 1.2 IDPs与逆境胁迫 | 第14-17页 |
| 1.2.1 稳定细胞膜 | 第15-16页 |
| 1.2.2 结合小分子 | 第16页 |
| 1.2.3 分子伴侣 | 第16-17页 |
| 1.3 本研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| 1.4 研究技术路线 | 第18-19页 |
| 第2章 At1g13930生物信息学分析 | 第19-30页 |
| 2.1 实验方法 | 第19-20页 |
| 2.1.1 生物信息学方法 | 第19-20页 |
| 2.1.2 (G+C)含量计算方法 | 第20页 |
| 2.2 结果与分析 | 第20-28页 |
| 2.2.1 At1g13930蛋白的氨基酸组成 | 第21-23页 |
| 2.2.2 At1g13930基因中G+C含量 | 第23页 |
| 2.2.3 At1g13930电荷量和亲水性检测 | 第23-24页 |
| 2.2.4 At1g13930蛋白质HCA值 | 第24-25页 |
| 2.2.5 At1g13930二级结构及蛋白结合位点的预测 | 第25-26页 |
| 2.2.6 At1g13930的翻译后修饰趋势 | 第26-28页 |
| 2.3 讨论 | 第28-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-30页 |
| 第3章 At1g13930基因启动子活性分析 | 第30-45页 |
| 3.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-31页 |
| 3.3 结果与分析 | 第31-43页 |
| 3.3.1 At1g13930启动子元件预测 | 第31-33页 |
| 3.3.2 非生物胁迫下At1g13930启动子功能分析 | 第33-40页 |
| 3.3.2.1 NaCl 处理下启动子活性 | 第34-35页 |
| 3.3.2.2 4℃处理启动子活性 | 第35-36页 |
| 3.3.2.3 37℃处理启动子活性 | 第36-37页 |
| 3.3.2.4 ABA处理启动子活性 | 第37-38页 |
| 3.3.2.5 IAA处理启动子活性 | 第38-39页 |
| 3.3.2.6 PEG处理启动子活性 | 第39-40页 |
| 3.3.3 不同生长阶段中At1g13930启动子活性 | 第40-41页 |
| 3.3.4 At1g13930启动子表达定位 | 第41-43页 |
| 3.4 讨论 | 第43-44页 |
| 3.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第4章 At1g13930对逆境胁迫应答的表型分析 | 第45-57页 |
| 4.1 实验材料 | 第45页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第45页 |
| 4.1.2 细菌材料 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 4.2.1 培养基中拟南芥芽期胁迫方法 | 第45-46页 |
| 4.2.2 培养基中拟南芥苗期胁迫方法 | 第46页 |
| 4.2.3 土壤中拟南芥苗期胁迫方法 | 第46页 |
| 4.2.4 原核细菌胁迫方法 | 第46页 |
| 4.3 结果分析 | 第46-55页 |
| 4.3.1 正常生长表型 | 第47-48页 |
| 4.3.2 At1g13930对Na Cl胁迫的应答 | 第48-50页 |
| 4.3.3 At1g13930对低温胁迫的应答 | 第50-51页 |
| 4.3.4 At1g13930对高温胁迫的应答 | 第51页 |
| 4.3.5 At1g13930对ABA胁迫的应答 | 第51-52页 |
| 4.3.6 At1g13930对干旱胁迫的应答 | 第52-54页 |
| 4.3.7 At1g13930提高了细菌对逆境胁迫的抗性 | 第54-55页 |
| 4.4 讨论 | 第55-56页 |
| 4.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 第5章 At1g13930及相关基因表达的q RT-PCR分析 | 第57-67页 |
| 5.1 实验材料及设备 | 第57页 |
| 5.2 实验方法 | 第57-59页 |
| 5.2.1 植物总RNA提取 | 第57页 |
| 5.2.2 DNase I（RNase Free）消化总RNA | 第57-58页 |
| 5.2.3 cDNA第一条链合成 | 第58页 |
| 5.2.4 PCR反应 | 第58-59页 |
| 5.2.5 qRT- PCR 反应 | 第59页 |
| 5.3 结果分析 | 第59-65页 |
| 5.3.1 At1g13930共表达基因的筛选及引物特异性检测 | 第59-62页 |
| 5.3.2 At1g13930及相关基因q RT- PCR分析 | 第62-65页 |
| 5.4 讨论 | 第65-66页 |
| 5.5 本章小结 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
