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云南番茄曲叶病毒致病因子C4与寄主因子NbSKη互作的研究

致谢第6-8页
摘要第8-9页
Abstract第9页
第一章 文献综述第15-35页
    1. 双生病毒的概述及研究进展第15-26页
        1.1 双生病毒的概述与分类第15-17页
        1.2 双生病毒基因组结构及编码蛋白的功能第17-19页
        1.3 双生病毒的复制第19-21页
        1.4 双生病毒的致病机制第21-26页
            1.4.1 双生病毒对细胞周期的调控第21-23页
            1.4.2 双生病毒对泛素化途径及类泛素化途径的调控第23-24页
            1.4.3 双生病毒对基因沉默途径的调控第24-26页
        1.5 云南番茄曲叶病毒(Tomato leaf curl Yunnan virus,TLCYnV)概述第26页
    2. 油菜素内酯(Brassinosteriod, BR)信号通路研究进展第26-29页
        2.1 油菜素内酯概述第26-27页
        2.2 油菜素内酯信号转导通路中的组份及功能第27-29页
            2.2.1 油菜素内酯信号的识别及信号在细胞膜上的传递第27-28页
                2.2.1.1 油菜素内酯信号识别受体BRI1第27页
                2.2.1.2 BRI1伴随受体激酶BAK1第27页
                2.2.1.3 BRI1激酶抑制子BKI1第27-28页
            2.2.2 细胞质中的BR信号激酶与磷酸酶第28页
                2.2.2.1 BR信号激酶BSK1和BRI1抑制子BSU1第28页
                2.2.2.2 BR不敏感激酶BIN2 (2.2.3细胞核中的BR信号传递第28页
            2.2.3 细胞核中的BR信号传递第28页
                2.2.3.1 BR信号途径末端的转录因子BZR1和BES1第28页
            2.2.4 油菜素内酯信号转导第28-29页
    3. 植物细胞周期研究进展第29-32页
        3.1 细胞周期与细胞分类第29-32页
            3.1.1 植物细胞周期中的组份及其功能第30-32页
            3.1.2 细胞周期中的内循环第32页
    4. 蛋白质翻译后修饰(Posttranslational modifications,PTMs)研究进展第32-34页
        4.1 磷酸化修饰在植物-病毒互作中的作用第32-33页
        4.2 蛋白质N端豆蔻酰化修饰(N-myristoylation)第33页
        4.3 蛋白质翻译后修饰间的相互影响(Crosstalk)第33-34页
        4.4 蛋白质翻译后修饰对蛋白质核穿梭的影响第34页
    5. 论文的主要工作和意义第34-35页
第二章 材料与方法第35-44页
    1. 材料第35页
        1.1 植物材料第35页
        1.2 病毒侵染性克隆第35页
        1.3 菌株和质粒第35页
        1.4 试剂第35页
    2. 方法第35-44页
        2.1 PCR技术第35-37页
            2.1.1 常规PCR第35-36页
            2.1.2 高保真DNA聚合酶PCR第36页
            2.1.3 Overlap Extension PCR第36-37页
        2.2 PCR产物及目的片段纯化第37页
        2.3 DNA克隆技术第37-39页
            2.3.1 TA连接第37-38页
            2.3.2 限制酶切口黏性末端连接第38页
            2.3.3 感受态细胞制备第38页
            2.3.4 转化第38-39页
        2.4 质粒的提取与鉴定第39页
            2.4.1 质粒小量提取试剂盒提取质粒第39页
            2.4.2 PCR鉴定阳性克隆第39页
            2.4.3 酶切鉴定第39页
        2.5 SDS-PAGE电泳第39-40页
        2.6 Western blot第40页
        2.7 酵母双杂交验证蛋白互作第40-41页
            2.7.1 酵母的转化第40-41页
            2.7.2 蛋白互作的验证第41页
        2.8 双分子荧光互补实验第41页
        2.9 植物RNA提取,反转录和RT-PCR第41-42页
            2.9.1 植物RNA提取第41-42页
            2.9.2 植物RNA的反转录第42页
            2.9.3 RT-PCR第42页
                2.9.3.1 半定量RT-PCR第42页
                2.9.3.2 定量RT-PCR第42页
        2.10 农杆菌浸润接种植物第42页
        2.11 双分子荧光互补试验第42-44页
第三章 云南番茄曲叶病毒致病因子C4对NbSKη亚细胞定位的影响第44-68页
    1. 材料第44页
        1.1 毒源第44页
        1.2 抗体第44页
    2. 方法第44-49页
        2.1 亚细胞结构分离试验(Subcellular Fractionation Assay)第44-45页
        2.2 膜悬浮试验(Membrane Flotation Assay)第45页
        2.3 与云南番茄曲叶病毒C4蛋白互作寄主因子的筛选试验第45-47页
            2.3.1 酵母菌株的活化第45页
            2.3.2 诱饵蛋白C4对酵母毒性及其自激活活性的检测第45页
            2.3.3 与TLCYnV C4互作因子的筛选第45-47页
                2.3.3.1 酵母感受态的制备第45-46页
                2.3.3.2 诱饵质粒pGBKT7-C4与文库质粒共转化AH109感受态细胞第46页
                2.3.3.3 TLCYnV C4互作因子筛选第46页
                2.3.3.4 酵母质粒的提取第46-47页
                2.3.3.5 候选互作因子的分离与确定第47页
                2.3.3.6 候选互作因子基因全长的克隆及互作验证第47页
        2.4 植物细胞核与细胞质分离试验(Nuclear-cytoplasmic Fractionation Assay)第47-48页
        2.5 免疫共沉淀试验(Co-immunoprecipitation,Co-IP)第48页
        2.6 免疫组织化学试验和透射电镜观察第48-49页
            2.6.1 样品的低温包埋第48-49页
            2.6.2 免疫胶体金标记第49页
    3. 结果与分析第49-67页
        3.1 采用酵母双杂交筛选本氏烟cDNA文库及候选基因的克隆第49页
        3.2 互作寄主因子在植物中的生理学功能第49-50页
        3.3 NbSKη与TLCYnV C4互作的验证第50-52页
            3.3.1 NbSKη与TLCYnV C4在酵母中的相互作用第50-51页
            3.3.2 NbSKη与TLCYnV C4在植物体内的相互作用第51-52页
        3.4 NbSKη与TLCYnV C4的互作对C4致病性的影响第52-55页
            3.4.1 利用酵母双杂交系统对C4与NbSKη互作关键位点的筛选第52-53页
            3.4.2 NbSKη与TLCYnV C4的互作对C4致病性的影响第53-55页
        3.5 TLCYnV C4对NbSKη亚细胞定位的影响第55-63页
            3.5.1 TLCYnV C4的亚细胞定位第55-57页
            3.5.2 NbSK的亚细胞定位第57页
            3.5.3 TLCYnV C4对NbSKη亚细胞定位的影响第57-63页
        3.6 NbSKη在TLCYnV C4致病性中的作用第63-66页
            3.6.1 沉默NbSKη的本氏烟表型与TLCYnV C4本氏烟表型相似第63-65页
            3.6.2 沉默NbSKη的本氏烟对PVX-C4敏感性的影响第65-66页
        3.7 35S::TLCYnV C4转基因拟南芥产生与过表达BZR1相似的表型第66-67页
    4. 讨论第67-68页
第四章 TLCYnV C4改变NbSKη亚细胞定位分子机制的研究第68-89页
    1. 材料第68页
        1.1 病毒第68页
        1.2 抗体第68页
    2. 方法第68-70页
        2.1 利用[γ-~(32)P] ATP的体外磷酸化试验第68-69页
        2.2 利用Cold ATP的体外磷酸化试验第69页
        2.3 体外豆蔻酰化试验第69页
            2.3.1 豆蔻酰化试验底物准备第69页
            2.3.2 体外豆蔻酰化试验第69页
        2.4 Tricine SDS-PAGE第69-70页
            2.4.1 12% Tricine分离胶的制备第69-70页
            2.4.2 5%浓缩胶的制备第70页
            2.4.3 Tricine SDS-PAGE第70页
        2.5 光转换试验第70页
    3. 结果与分析第70-88页
        3.1 NbSKη磷酸化TLCYnV C4且C4的第51位Thr是潜在磷酸化位点第70-72页
        3.2 NbSKη对TLCYnV C4的磷酸化影响C4对NbSKη亚细胞定位的改变第72-75页
            3.2.1 TLCYnV C4 (T51A)不影响其与NbSKη的互作但影响其致病性第72-73页
            3.2.2 NbSKη对TLCYnV C4的磷酸化影响C4介导的NbSKη亚细胞定位改变第73-74页
            3.2.3 TLCYnV C4的磷酸化对于C4改变NbSKη亚细胞定位是必需的第74-75页
        3.3 TLCYnV C4N端豆蔻酰化修饰影响C4对NbSKη亚细胞定位改变第75-77页
            3.3.1 TLCYnV C4通过N端豆蔻酰化修饰而定位至细胞膜上第75-77页
            3.3.2 TLCYnV C4N端豆蔻酰化修饰对NbSKη亚细胞定位的影响第77页
        3.4 TLCYnV C4 N端豆蔻酰化修饰对TLCYnV C4致病性的影响第77-78页
        3.5 NbSKη对TLCYnV C4的磷酸化修饰促进C4的N端豆蔻酰化修饰第78-79页
        3.6 NbSKη对TLCYnV C4的磷酸化介导C4的核质穿梭第79-83页
            3.6.1 NbSKη在细胞核中将TLCYnV C4磷酸化第80页
            3.6.2 TLCYnV C4的核输出过程依赖核输出蛋白(Exportin-α)第80-81页
            3.6.3 利用光转换蛋白Dendra2检测TLCYnV C4的核输出过程第81-83页
        3.7 NbSKη对TLCYnV C4的磷酸化介导TLCYnV C4的核输出第83页
        3.8 TLCYnV C4核输出伴随NbSKη出核第83-85页
        3.9 TLCYnV C4与核输出蛋白(Exportin-α) XPOI互作第85-87页
            3.9.1 TLCYnV C4出核信号的鉴定第85-86页
            3.9.2 TLCYnV C4与核输出蛋白(Exportin-α) XPOI互作第86-87页
        3.10 由NbSKη磷酸化介导的TLCYnV C4核穿梭过程影响C4的致病性第87-88页
    4. 讨论第88-89页
第五章 TLCYnV C4与NbSKη互作生物学意义的研究第89-106页
    1. 材料第89页
        1.1 病毒第89页
        1.2 抗体第89页
    2. 方法第89-90页
        2.1 利用[γ-~(32)P] ATP的体外磷酸化试验第89页
        2.2 利用Cold ATP的体外磷酸化试验第89-90页
        2.3 半体内蛋白降解试验第90页
        2.4 半体内MG132抑制蛋白降解试验第90页
    3. 结果与分析第90-105页
        3.1 TLCYnV C4可以诱导细胞分裂第91-92页
        3.2 油菜素内酯信号转导途径参与TLCYnV C4转基因本氏烟叶片上突起的形成第92页
        3.3 NbSKη负调控叶片突起表型的产生第92-94页
        3.4 TLCYnV C4通过与NbSKη互作影响本氏烟叶片突起症状的产生第94页
        3.5 TLCYnV C4主要影响细胞周期的G1期第94-95页
        3.6 NbSKη与本氏烟NbCycD1;1蛋白互作第95-96页
        3.7 35S::NbCycD1;1转基因本氏烟表现出35S::TLCYnV C4转基因本氏烟的表型第96-97页
        3.8 NbSKη通过磷酸化影响NbCycD1;1的稳定性第97-102页
            3.8.1 NbCycD1;1的亚细胞定位及蛋白稳定性第97-98页
            3.8.2 NbSKη磷酸化NbCycD1;1第98-99页
            3.8.3 NbSKη通过磷酸化NbCycD1;1影响NbCycD1;1的稳定性第99-102页
        3.9 TLCYnV C4通过与NbSKη互作增加NbCycD1;1的蛋白稳定性第102-103页
            3.9.1 TLCYnV C4可以增加NbCycD1;1的蛋白稳定性第102-103页
        3.10 通过半体内蛋白降解试验证明TLCYnV C4抑制NbCycD1;1的降解第103-105页
    4. 讨论第105-106页
第六章 全文总结第106-108页
参考文献第108-126页
附录A 常用化学试剂、分子生物学试剂及仪器第126-127页
附录B 常用缓冲液及培养基配方第127-131页

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