| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-28页 |
| 1.1 犬乳腺肿瘤研究概况 | 第13-19页 |
| 1.1.1 流行病学 | 第13页 |
| 1.1.2 乳腺肿瘤的分型 | 第13-14页 |
| 1.1.3 三阴性乳腺肿瘤 | 第14-16页 |
| 1.1.4 诊断 | 第16-18页 |
| 1.1.5 比较医学 | 第18-19页 |
| 1.1.6 预后 | 第19页 |
| 1.2 犬乳腺肿瘤的治疗方法 | 第19-21页 |
| 1.2.1 外科手术切除 | 第19-20页 |
| 1.2.2 化疗 | 第20-21页 |
| 1.2.3 靶向治疗 | 第21页 |
| 1.2.4 免疫治疗 | 第21页 |
| 1.3 肿瘤的细菌疗法 | 第21-23页 |
| 1.3.1 抗肿瘤的细菌种类 | 第22页 |
| 1.3.2 奇异变形杆菌 | 第22页 |
| 1.3.3 细菌抗肿瘤的机制 | 第22-23页 |
| 1.3.4 细菌疗法的优缺点 | 第23页 |
| 1.4 肿瘤与缺氧 | 第23-26页 |
| 1.4.1 缺氧在肿瘤进展和转移中的作用 | 第23-25页 |
| 1.4.2 缺氧的相关因子及治疗靶点 | 第25-26页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第26页 |
| 1.6 技术路线 | 第26-28页 |
| 1.6.1 犬三阴性乳腺肿瘤细胞系的建立 | 第26-27页 |
| 1.6.2 奇异变形杆菌抗肿瘤作用的研究 | 第27-28页 |
| 第二章 犬三阴性乳腺肿瘤细胞系的建立和鉴定 | 第28-47页 |
| 2.1 材料 | 第28-30页 |
| 2.1.1 试验对象 | 第28页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第28-30页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第30页 |
| 2.2 方法 | 第30-35页 |
| 2.2.1 组织样本收集 | 第30页 |
| 2.2.2 原代细胞培养 | 第30-31页 |
| 2.2.3 组织蜡块制备 | 第31页 |
| 2.2.4 石蜡切片制备 | 第31页 |
| 2.2.5 苏木精-伊红(H&E)染色与组织病理学判读 | 第31-32页 |
| 2.2.6 组织免疫化学染色(IHC) | 第32-33页 |
| 2.2.7 光学显微镜和扫描电镜形态学观察 | 第33页 |
| 2.2.8 生长曲线的绘制和细胞增殖倍增时间 | 第33-34页 |
| 2.2.9 核型分析 | 第34页 |
| 2.2.10 克隆形成试验 | 第34页 |
| 2.2.11 细胞免疫化学染色(ICC) | 第34页 |
| 2.2.12 异种移植小鼠模型的建立 | 第34-35页 |
| 2.2.13 支原体污染检测 | 第35页 |
| 2.3 结果 | 第35-44页 |
| 2.3.1 CMT-7364细胞系的建立 | 第35-36页 |
| 2.3.2 原发肿瘤是三阴性犬乳腺肿瘤 | 第36-38页 |
| 2.3.3 CMT-7364细胞的生长情况和增殖倍增时间 | 第38页 |
| 2.3.4 CMT-7364呈上皮细胞样形态 | 第38-39页 |
| 2.3.5 CMT-7364细胞的染色体异常 | 第39-40页 |
| 2.3.6 CMT-7364细胞集落形成能力强 | 第40页 |
| 2.3.7 CMT-7364细胞表达间质细胞的标志物 | 第40-41页 |
| 2.3.8 CMT-7364细胞成瘤特性和转移潜能 | 第41-44页 |
| 2.3.9 CMT-7364细胞无支原体污染 | 第44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-46页 |
| 2.5 小结 | 第46-47页 |
| 第三章 奇异变形杆菌对犬乳腺肿瘤小鼠模型肿瘤的作用 | 第47-60页 |
| 3.1 材料 | 第47-48页 |
| 3.1.1 试验对象 | 第47页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第47-48页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第48页 |
| 3.2 方法 | 第48-51页 |
| 3.2.1 细菌和细胞系 | 第48页 |
| 3.2.2 细胞黏附性试验 | 第48-49页 |
| 3.2.3 细胞生长抑制试验 | 第49页 |
| 3.2.4 集落形成试验 | 第49页 |
| 3.2.5 细菌在小鼠体内的生物分布 | 第49-50页 |
| 3.2.6 21d细菌治疗试验 | 第50页 |
| 3.2.7 数据统计 | 第50-51页 |
| 3.3 结果 | 第51-58页 |
| 3.3.1 P.mirabilis在体外发挥非特异性的溶细胞作用 | 第51-52页 |
| 3.3.2 在体内P.mirabilis靶向肿瘤组织 | 第52-54页 |
| 3.3.3 P.mirabilis抑制荷瘤小鼠的异种移植肿瘤生长 | 第54-56页 |
| 3.3.4 P.mirabilis抑制荷瘤小鼠自发性肺脏的转移 | 第56-58页 |
| 3.4 讨论 | 第58-59页 |
| 3.5 小结 | 第59-60页 |
| 第四章 奇异变形杆菌抑制犬乳腺肿瘤的生长和转移机制探究 | 第60-73页 |
| 4.1 材料 | 第60-62页 |
| 4.1.1 试验对象 | 第60页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第60-62页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第62页 |
| 4.2 方法 | 第62-66页 |
| 4.2.1 LPS的提取和鉴定 | 第62-63页 |
| 4.2.2 LPS对荷瘤小鼠的肿瘤生长和肺脏转移的作用 | 第63页 |
| 4.2.3 细胞因子的检测 | 第63-65页 |
| 4.2.4 Western Blotting | 第65-66页 |
| 4.2.5 组织免疫化学 | 第66页 |
| 4.2.6 数据统计 | 第66页 |
| 4.3 结果 | 第66-71页 |
| 4.3.1 P.mirabilis的LPS对肿瘤的生长和肺脏转移无作用 | 第66-67页 |
| 4.3.2 P.mirabilis诱发机体的轻微免疫反应 | 第67-69页 |
| 4.3.3 P.mirabilis下调缺氧因子的表达 | 第69-71页 |
| 4.4 讨论 | 第71-72页 |
| 4.5 小结 | 第72-73页 |
| 第五章 结论与创新 | 第73-75页 |
| 5.1 结论 | 第73页 |
| 5.2 创新 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-89页 |
| 致谢 | 第89-91页 |
| 作者简介 | 第91-92页 |
