| 提要 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| abstract | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第17-41页 |
| 1.1 电子自旋共振技术及应用 | 第17-21页 |
| 1.1.1 基本原理 | 第17页 |
| 1.1.2 电子自旋共振谱仪 | 第17-19页 |
| 1.1.3 电子自旋共振技术的发展和在定量分析中的应用 | 第19-21页 |
| 1.2 免疫分析 | 第21-26页 |
| 1.2.1 IgG免疫分析研究进展 | 第21-22页 |
| 1.2.2 免疫分析技术分类及发展现状 | 第22-26页 |
| 1.2.2.1 放射免疫分析 | 第22-23页 |
| 1.2.2.2 酶联免疫吸附试验 | 第23-25页 |
| 1.2.2.3 荧光免疫分析 | 第25页 |
| 1.2.2.4 化学发光免疫分析 | 第25-26页 |
| 1.2.2.5 表面等离子体共振免疫技术 | 第26页 |
| 1.3 铁纳米粒子及应用 | 第26-27页 |
| 1.4 抗氧化性物质及抗氧化能力的测量 | 第27-29页 |
| 1.4.1 抗氧化物质 | 第27-28页 |
| 1.4.2 物质抗氧化能力测量方法 | 第28-29页 |
| 1.4.2.1 DPPH法 | 第28页 |
| 1.4.2.2 CUPRAC法 | 第28-29页 |
| 1.4.2.3 ABTS法 | 第29页 |
| 1.4.2.4 FRAP法 | 第29页 |
| 1.5 本论文的主要研究内容 | 第29-31页 |
| 1.5.1 以铁纳米粒子为探针的电子自旋共振免疫分析 | 第29页 |
| 1.5.2 电子自旋共振技术测定巯基化合物的抗氧化能力和巯基数 | 第29-30页 |
| 1.5.3 基于生物素-亲和素系统的电子自旋共振免疫分析 | 第30页 |
| 1.5.4 电子自旋共振技术测量水果的抗氧化能力 | 第30-31页 |
| 1.6 参考文献 | 第31-41页 |
| 第二章 铁纳米粒子为探针的电子自旋共振法测定兔IgG | 第41-65页 |
| 2.1 实验 | 第43-49页 |
| 2.1.1 仪器 | 第43页 |
| 2.1.2 试剂和材料 | 第43-45页 |
| 2.1.2.1 试剂 | 第43-44页 |
| 2.1.2.2 耗材 | 第44页 |
| 2.1.2.3 溶液配制 | 第44-45页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第45-49页 |
| 2.1.3.1 10nmIONP-羊抗兔IgG多克隆抗体悬浮液的制备 | 第46-47页 |
| 2.1.3.2 铁纳米粒子(30nm)连接羊抗兔IgG多克隆抗体 | 第47页 |
| 2.1.3.3 琼脂糖-兔IgG的制备 | 第47-48页 |
| 2.1.3.4 兔IgG标准溶液的配制 | 第48页 |
| 2.1.3.5 铁纳米粒子的免疫反应步骤 | 第48页 |
| 2.1.3.6 ESR测量样品的制备 | 第48-49页 |
| 2.1.3.7 ESR测试 | 第49页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第49-60页 |
| 2.2.1 铁纳米粒子与羊抗兔IgG多抗连接时间对抗体连接效率的影响 | 第49-50页 |
| 2.2.2 铁纳米粒子的粒径和Zeta电势 | 第50-52页 |
| 2.2.3 ESR测量样品制备 | 第52-53页 |
| 2.2.4 ESR谱图 | 第53-54页 |
| 2.2.5 30nm铁纳米粒子为探针的ESR法的分析性能 | 第54-56页 |
| 2.2.6 10nm铁纳米粒子为探针的ESR法的分析性能 | 第56-58页 |
| 2.2.7 实际样品分析 | 第58页 |
| 2.2.8 与其它方法对比 | 第58-60页 |
| 2.3 小结 | 第60-61页 |
| 2.4 参考文献 | 第61-65页 |
| 第三章 基于Cu~(2+)还原的电子自旋共振法测定巯基化合物的抗氧化能力和巯基数 | 第65-91页 |
| 3.1 实验 | 第67-72页 |
| 3.1.1 仪器 | 第67页 |
| 3.1.2 试剂与材料 | 第67-69页 |
| 3.1.2.1 试剂 | 第67页 |
| 3.1.2.2 材料 | 第67-68页 |
| 3.1.2.3 溶液配制 | 第68-69页 |
| 3.1.2.4 标加样品制备 | 第69页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第69-72页 |
| 3.1.3.1 分析样品制备 | 第69页 |
| 3.1.3.2 紫外-可见分光光度法 | 第69-70页 |
| 3.1.3.3 ESR法 | 第70-71页 |
| 3.1.3.4 Ellman法 | 第71页 |
| 3.1.3.5 CUPRAC法 | 第71页 |
| 3.1.3.6 实际结果的表示 | 第71-72页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第72-85页 |
| 3.2.1 实验条件优化 | 第72-74页 |
| 3.2.1.1 pH值 | 第72-73页 |
| 3.2.1.2 反应时间 | 第73-74页 |
| 3.2.2 电子自旋共振谱图 | 第74-75页 |
| 3.2.3 标准曲线 | 第75-78页 |
| 3.2.4 与CUPRAC和Ellman法比较 | 第78-84页 |
| 3.2.4.1 CUPRAC和Ellman法标准曲线 | 第78-81页 |
| 3.2.4.2 与CUPRAC和Ellman法的比较 | 第81-84页 |
| 3.2.5 实际样品分析 | 第84-85页 |
| 3.3 小结 | 第85-87页 |
| 3.4 参考文献 | 第87-91页 |
| 第四章 基于生物素-亲和素系统的电子自旋共振法测定兔IgG的初步研究 | 第91-109页 |
| 4.1 实验部分 | 第93-96页 |
| 4.1.1 仪器 | 第93页 |
| 4.1.2 试剂与耗材 | 第93页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第93-96页 |
| 4.1.3.1 缓冲溶液的制备 | 第93-94页 |
| 4.1.3.2 羊抗兔IgG多克隆抗体包被96孔板 | 第94页 |
| 4.1.3.3 羊抗兔IgG-生物素制备 | 第94-95页 |
| 4.1.3.4 亲和素与HRP-biotin预混液的制备 | 第95页 |
| 4.1.3.5 显色液的制备 | 第95页 |
| 4.1.3.6 兔IgG标准溶液的制备 | 第95页 |
| 4.1.3.7 分析样品制备 | 第95-96页 |
| 4.1.3.8 ESR测试 | 第96页 |
| 4.1.3.9 ELISA实验 | 第96页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第96-103页 |
| 4.2.1 抗体与生物素连接比例对标准曲线的影响 | 第96-97页 |
| 4.2.2 HRP-biotin与亲和素的使用比例对标准曲线的影响 | 第97-99页 |
| 4.2.3 显色液pH值对标准曲线的影响 | 第99-100页 |
| 4.2.4 ESR测量的标准曲线 | 第100-103页 |
| 4.3 小结 | 第103-105页 |
| 4.4 参考文献 | 第105-109页 |
| 第五章 基于Cu~(2+)离子还原电子自旋共振技术测定水果的抗氧化能力 | 第109-123页 |
| 5.1 实验部分 | 第110-113页 |
| 5.1.1 仪器 | 第110-111页 |
| 5.1.2 试剂与耗材 | 第111-112页 |
| 5.1.2.1 化学试剂 | 第111页 |
| 5.1.2.2 水果样品 | 第111页 |
| 5.1.2.3 材料 | 第111页 |
| 5.1.2.4 溶液配制 | 第111-112页 |
| 5.1.3 实验方法 | 第112-113页 |
| 5.1.3.1 水果样品的处理及保存 | 第112页 |
| 5.1.3.2 水果样品溶液的制备 | 第112页 |
| 5.1.3.3 分析溶液的制备 | 第112页 |
| 5.1.3.4 用紫外-可见光度法分析样品 | 第112页 |
| 5.1.3.5 用ESR法分析样品 | 第112-113页 |
| 5.1.3.6 DPPH法 | 第113页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第113-119页 |
| 5.2.1 ESR和UV-vis检测谱图 | 第113-114页 |
| 5.2.2 ESR法和UV-vis法结果 | 第114-116页 |
| 5.2.2.1 ESR法和UV-vis法测量的VCEAC值 | 第114-116页 |
| 5.2.2.2 ESR和UV-vis测量结果的相关性分析 | 第116页 |
| 5.2.3 DPPH法测量的水果样品的VCEAC值 | 第116-118页 |
| 5.2.4 ESR法和DPPH法测量结果的相关性分析 | 第118-119页 |
| 5.3 小结 | 第119-120页 |
| 5.4 参考文献 | 第120-123页 |
| 附录 | 第123-125页 |
| 致谢 | 第125页 |
