| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第一章 引言 | 第13-22页 |
| 1.1 土壤盐渍化及盐生植物 | 第13-14页 |
| 1.1.1 土壤盐渍化的影响 | 第13页 |
| 1.1.2 土壤盐渍化改良 | 第13-14页 |
| 1.1.3 中华补血草 | 第14页 |
| 1.2 植物根际促生菌的研究 | 第14-15页 |
| 1.2.1 PGPR的作用 | 第14-15页 |
| 1.2.2 PGPR类群 | 第15页 |
| 1.2.3 耐盐植物的PGPR | 第15页 |
| 1.3 PGPR提高植物耐盐性的主要机理 | 第15-17页 |
| 1.3.1 影响植物的渗透调节 | 第16页 |
| 1.3.2 影响植物的光合作用 | 第16页 |
| 1.3.3 抗氧化系统的改变 | 第16页 |
| 1.3.4 改变离子含量及K~+/Na~+比值 | 第16-17页 |
| 1.4 植物促生菌的根际定殖及其与植物的根际相互作用 | 第17-18页 |
| 1.4.1 根际定殖及影响因素 | 第17页 |
| 1.4.2 根际定殖的检测手段 | 第17-18页 |
| 1.5 根系分泌物 | 第18-19页 |
| 1.5.1 根系分泌物的概念与种类 | 第18页 |
| 1.5.2 根系分泌物对微生物的影响 | 第18页 |
| 1.5.3 根系分泌物介导的植物-微生物互作的的分子机理 | 第18-19页 |
| 1.5.4 微生物对植物根系分泌物的影响 | 第19页 |
| 1.6 研究内容、意义及创新点 | 第19-22页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第19-20页 |
| 1.6.2 研究意义 | 第20页 |
| 1.6.3 创新点 | 第20页 |
| 1.6.4 技术路线路线图路线图 | 第20-22页 |
| 第二章 盐胁迫下弯曲芽孢杆菌KLBMP4941对中华补血草的促生作用的研究 | 第22-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.2 试验设计 | 第24页 |
| 2.1.3 生理指标的测量 | 第24页 |
| 2.1.4 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第24页 |
| 2.1.5 叶绿素含量的提取 | 第24页 |
| 2.1.6 抗氧化酶含量的测定 | 第24-25页 |
| 2.1.7 脯氨酸含量测定 | 第25页 |
| 2.1.8 离子含量测定 | 第25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-32页 |
| 2.2.1 生理指标测定结果 | 第25-27页 |
| 2.2.2 丙二醛(MDA)测定结果 | 第27-28页 |
| 2.2.3 叶绿素含量测定结果 | 第28-29页 |
| 2.2.4 抗氧化酶活性测定结果 | 第29-30页 |
| 2.2.5 脯氨酸含量测定 | 第30-31页 |
| 2.2.6 离子含量测定结果 | 第31-32页 |
| 2.3 本章小结 | 第32-34页 |
| 第三章 弯曲芽孢杆菌KLBMP4941的全基因组解析 | 第34-44页 |
| 3.1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 3.1.1 菌株来源 | 第34页 |
| 3.1.2 主要设备 | 第34-35页 |
| 3.1.3 基因组DNA提取 | 第35页 |
| 3.1.4 16SrRNA基因PCR扩增 | 第35页 |
| 3.1.5 构建菌株的系统发育树 | 第35页 |
| 3.1.6 测序及拼接组装 | 第35页 |
| 3.1.7 基因组组分分析及基因注释 | 第35-36页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 3.2.1 KLBMP4941系统发育树构建结果 | 第36页 |
| 3.2.2 基因组拼接组装及分析 | 第36-37页 |
| 3.2.3 基因功能注释 | 第37-42页 |
| 3.3 本章小结 | 第42-44页 |
| 第四章 菌株KLBMP4941在宿主根际的定殖研究 | 第44-54页 |
| 4.1 材料与方法 | 第44-49页 |
| 4.1.1 主要试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 4.1.2 试验材料 | 第45页 |
| 4.1.3 PHT43-GFP载体制备 | 第45-46页 |
| 4.1.4 PHT43-GFP转化到大肠杆菌DH5α | 第46-47页 |
| 4.1.5 菌落PCR | 第47页 |
| 4.1.6 筛选阳性克隆送样测序及酶切验证 | 第47-48页 |
| 4.1.7 菌株KLBMP4941原生质体转化法 | 第48页 |
| 4.1.8 菌落观察及GFP基因检测 | 第48页 |
| 4.1.9 菌株4941-GFP的质粒稳定性检测 | 第48-49页 |
| 4.1.10 野生菌株KLBMP4941与4941-GFP生长曲线的比较 | 第49页 |
| 4.1.11 菌株4941-GFP在补血草根际定殖的观察 | 第49页 |
| 4.2 结果与分析 | 第49-53页 |
| 4.2.1 PHT43-GFP构建的结果 | 第49-50页 |
| 4.2.2 4941-GFP构建的结果 | 第50-51页 |
| 4.2.3 4941-GFP中的质粒稳定性测定 | 第51页 |
| 4.2.4 野生型KLBMP4941和4941-GFP的生长曲线比较 | 第51-52页 |
| 4.2.5 4941-GFP在中华补血草根部的定殖研究 | 第52-53页 |
| 4.3 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 盐胁迫下中华补血草根系分泌物与菌株KLBMP4941互作机理 | 第54-83页 |
| 5.1 材料与方法 | 第54-60页 |
| 5.1.1 主要试剂与仪器 | 第54-55页 |
| 5.1.2 试验材料 | 第55页 |
| 5.1.3 盐胁迫下中华补血草根系分泌物的收集 | 第55页 |
| 5.1.4 根系分泌物的鉴定及分析 | 第55-56页 |
| 5.1.5 根系分泌物粗提物及主要成分单体对KLBMP4941生长量的影响 | 第56页 |
| 5.1.6 根系分泌物及主要成分单体对KLBMP4941趋化作用的影响 | 第56-57页 |
| 5.1.7 根系分泌物主要成分单品对KLBMP4941游动的影响 | 第57页 |
| 5.1.8 根系分泌物及主要成分对KLBMP4941根际定殖的影响 | 第57页 |
| 5.1.9 样品处理和菌株RNA提取 | 第57页 |
| 5.1.10 转录组测序 | 第57-58页 |
| 5.1.11 表达差异基因分析及功能注释 | 第58-60页 |
| 5.2 结果与分析 | 第60-80页 |
| 5.2.1 根系分泌物粗提物对KLBMP4941生长量的影响 | 第60页 |
| 5.2.2 根系分泌物粗提物对KLBMP4941趋化作用的影响结果分析 | 第60-61页 |
| 5.2.3 盐胁迫下中华补血草根系分泌物成分的分析 | 第61-62页 |
| 5.2.4 根系分泌物主要单体成分对KLBMP4941生长量的影响 | 第62-64页 |
| 5.2.5 根系分泌物主要单体成分对KLBMP4941趋化作用的影响结果分析 | 第64-65页 |
| 5.2.6 根系分泌物主要成分单品对KLBMP4941游动作用的结果分析 | 第65-68页 |
| 5.2.7 根系分泌物及主要成分单品对KLBMP4941根际定殖的影响 | 第68-69页 |
| 5.2.8 测序数据及其质量控制的实验结果 | 第69-70页 |
| 5.2.9 差异表达分析 | 第70页 |
| 5.2.10 两组显著性差异表达基因的整体分类 | 第70-71页 |
| 5.2.11 两组显著性差异表达基因具体分析 | 第71-76页 |
| 5.2.12 GO功能分类 | 第76-77页 |
| 5.2.13 KEGG代谢途径分类 | 第77-80页 |
| 5.2.14 QRT-PCR结果 | 第80页 |
| 5.3 本章小结 | 第80-83页 |
| 第六章 总结与展望 | 第83-87页 |
| 参考文献 | 第87-97页 |
| 致谢 | 第97-99页 |
| 作者简历 | 第99-101页 |
| 学位论文数据集 | 第101页 |
