| 摘要 | 第9-13页 |
| ABSTRACT | 第13-17页 |
| 第一章 引言 | 第18-36页 |
| 1 卡拉胶寡糖的研究进展 | 第18-24页 |
| 1.1 卡拉胶寡糖 | 第18-19页 |
| 1.2 卡拉胶寡糖功能活性研究 | 第19-20页 |
| 1.3 卡拉胶寡糖的制备 | 第20-21页 |
| 1.4 卡拉胶寡糖的分离纯化及结构序列分析方法 | 第21-24页 |
| 2 微生物固定化技术 | 第24-26页 |
| 2.1 固定化载体 | 第24-25页 |
| 2.2 微生物固定化方法 | 第25页 |
| 2.3 磁性微球的研究概况 | 第25-26页 |
| 2.4 磁性微球的应用 | 第26页 |
| 3 免疫防御 | 第26-29页 |
| 3.1 免疫的三大功能 | 第26页 |
| 3.2 免疫防御的概述 | 第26-27页 |
| 3.3 内毒素(LPS)介导的免疫应答 | 第27-29页 |
| 4 蛋白质组学概述 | 第29-32页 |
| 4.1 蛋白质组学 | 第29页 |
| 4.2 蛋白质组的转录后修饰 | 第29-30页 |
| 4.3 蛋白质组学的研究技术 | 第30-31页 |
| 4.4 蛋白质组学的应用 | 第31-32页 |
| 5 本论文的立题背景及内容 | 第32-36页 |
| 5.1 本论文的研究意义及目的 | 第32-33页 |
| 5.2 本论文的研究内容 | 第33-34页 |
| 5.3 技术路线图 | 第34-36页 |
| 第二章 κ-卡拉胶降解菌的筛选鉴定及其发酵动力学模型 | 第36-60页 |
| 1 材料与方法 | 第36-42页 |
| 1.1 材料 | 第36页 |
| 1.2 试验试剂 | 第36页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第36-37页 |
| 1.4 培养基 | 第37页 |
| 1.5 试验方法 | 第37-41页 |
| 1.6 数据处理与分析 | 第41-42页 |
| 2 结果与讨论 | 第42-59页 |
| 2.1 菌株筛选鉴定 | 第42-44页 |
| 2.2 发酵条件对菌株产酶的影响 | 第44-46页 |
| 2.3 培养基发酵优化 | 第46-55页 |
| 2.4 验证试验 | 第55-56页 |
| 2.5 发酵动力学模型建立 | 第56-59页 |
| 3 本章小结 | 第59-60页 |
| 第三章 固定化κ-卡拉胶降解菌生产κ-卡拉胶酶的研究 | 第60-80页 |
| 1 材料与方法 | 第60-64页 |
| 1.1 材料 | 第60页 |
| 1.2 试验试剂 | 第60-61页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第61页 |
| 1.4 试验方法 | 第61-64页 |
| 1.5 数据处理与分析 | 第64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-79页 |
| 2.1 固定化载体筛选 | 第64-66页 |
| 2.2 X-射线衍射(XRD) | 第66-67页 |
| 2.3 微球的磁性响应特性分析 | 第67-68页 |
| 2.4 固定化菌体SEM分析 | 第68-71页 |
| 2.5 固定菌体CLSM分析 | 第71-72页 |
| 2.6 Fe3O4:Chitosan比例及反应温度对固定化效果的影响 | 第72-73页 |
| 2.7 温度、pH及IMB添加量对发酵效果的影响 | 第73-75页 |
| 2.8 固定菌及游离菌产κ-卡拉胶酶动力学分析 | 第75页 |
| 2.9 固定菌发酵稳定性分析 | 第75-76页 |
| 2.10 κ-卡拉胶寡糖稳定性分析 | 第76-77页 |
| 2.11 菌株TF-332与载体Fe3O4-Chitosan结合机理 | 第77-79页 |
| 3 本章小结 | 第79-80页 |
| 第四章 κ-卡拉胶寡糖快速分离制备及其结构序列分析 | 第80-112页 |
| 1 材料与方法 | 第80-83页 |
| 1.1 试验试剂 | 第80页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第80页 |
| 1.3 试验方法 | 第80-82页 |
| 1.4 数据处理与分析 | 第82-83页 |
| 2 结果与分析 | 第83-110页 |
| 2.1 κ-卡拉胶寡糖的红外光谱分析 | 第83-84页 |
| 2.2 K-卡拉胶寡糖薄层层析色谱分析 | 第84-85页 |
| 2.3 洗脱速度对分离效果的影响 | 第85-86页 |
| 2.4 上样浓度对分离效果的影响 | 第86页 |
| 2.5 上样体积对分离效果的影响 | 第86-91页 |
| 2.6 质谱分析(ESI-MS) | 第91-94页 |
| 2.7 电喷雾电离质谱分析(CID-MS/MS) | 第94-96页 |
| 2.8 核磁共振(NMR)分析 | 第96-110页 |
| 3 本章小结 | 第110-112页 |
| 第五章 K-卡拉胶寡糖免疫防御功效的研究 | 第112-126页 |
| 1 材料与方法 | 第112-117页 |
| 1.1 材料 | 第112页 |
| 1.2 试验试剂 | 第112-113页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第113页 |
| 1.4 试验方法 | 第113-117页 |
| 1.5 数据处理与分析 | 第117页 |
| 2 结果分析 | 第117-125页 |
| 2.1 KCOs的细胞毒性评价 | 第117-118页 |
| 2.2 KCOs对巨噬细胞分泌TNF-α及TNF-α mRNA表达的影响 | 第118-119页 |
| 2.3 KCOs对巨噬细胞分泌IL-1β及IL-1β mRNA表达的影响 | 第119-120页 |
| 2.4 KCOs对巨噬细胞分泌IL-8及IL-8 mRNA表达的影响 | 第120-121页 |
| 2.5 KCOs对巨噬细胞分泌NO及iNOS表达的影响 | 第121-122页 |
| 2.6 KCOs对巨噬细胞分泌ROS及COX-2表达的影响 | 第122-125页 |
| 3 本章小结 | 第125-126页 |
| 第六章 K-卡拉胶寡糖对巨噬细胞免疫防御调节机制的研究 | 第126-144页 |
| 1. 材料与方法 | 第127-130页 |
| 1.1. 试验试剂 | 第127页 |
| 1.2. 仪器与设备 | 第127页 |
| 1.3. 试验方法 | 第127-128页 |
| 1.4. 数据处理与分析 | 第128-130页 |
| 2. 结果与分析 | 第130-142页 |
| 2.1. 差异蛋白的鉴定 | 第130-132页 |
| 2.2. 差异蛋白质Gene Ontology注释分析 | 第132-134页 |
| 2.3. 差异表达蛋白Reactome Pathway分析 | 第134-136页 |
| 2.4. 差异表达蛋白Ingenuity canonical pathway (IPA)分析 | 第136-140页 |
| 2.5. KCOs免疫防御信号通路调节分析 | 第140-142页 |
| 3. 本章小结 | 第142-144页 |
| 结论与展望 | 第144-147页 |
| 1. 结论 | 第144-146页 |
| 2. 本论文的主要创新点 | 第146页 |
| 3. 展望 | 第146-147页 |
| 参考文献 | 第147-162页 |
| 附录 | 第162-164页 |
| 致谢 | 第164-165页 |
