| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 0 前言 | 第12-14页 |
| 1 文献综述 | 第14-28页 |
| 1.1 麻痹性贝毒的分类及性质 | 第14-17页 |
| 1.1.1 麻痹性贝毒的分类 | 第14页 |
| 1.1.2 麻痹性贝毒的性质 | 第14-17页 |
| 1.2 麻痹性贝毒的来源和分布 | 第17-21页 |
| 1.3 麻痹性贝毒的分析方法 | 第21-23页 |
| 1.3.1 小鼠生物测试法 | 第21页 |
| 1.3.2 酶联免疫分析法 | 第21页 |
| 1.3.3 高效液相色谱法 | 第21-22页 |
| 1.3.4 液相色谱-质谱联用法 | 第22-23页 |
| 1.4 麻痹性贝毒在双壳贝类体内的生物转化过程研究 | 第23-26页 |
| 1.5 麻痹性贝毒在贝类组织体外的生物转化过程研究 | 第26页 |
| 1.6 研究内容的目的、意义及路线 | 第26-28页 |
| 1.6.1 研究内容的目的与意义 | 第26-27页 |
| 1.6.2 技术路线 | 第27-28页 |
| 2 双壳贝类体内麻痹性贝毒的代谢转化 | 第28-45页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第28-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-33页 |
| 2.2.1 ATHK 的培养 | 第30页 |
| 2.2.2 ATHK 藻毒素的提取 | 第30页 |
| 2.2.3 麻痹性贝毒在双壳贝类体内生物转化实验的设计 | 第30-31页 |
| 2.2.4 样品制备 | 第31-32页 |
| 2.2.5 麻痹性贝毒的 LC-MS/MS 分析 | 第32-33页 |
| 2.3 实验结果 | 第33-42页 |
| 2.3.1 ATHK 藻毒素的毒素成分 | 第33-36页 |
| 2.3.2 麻痹性贝毒在紫贻贝体内的生物转化 | 第36-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-44页 |
| 2.5 小结 | 第44-45页 |
| 3 麻痹性贝毒在离体贝类组织培养中的转化及其影响因素 | 第45-60页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第45-46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-49页 |
| 3.2.1 离体贝类组织的制备 | 第46页 |
| 3.2.2 麻痹性贝毒混合标准的配制 | 第46-47页 |
| 3.2.3 麻痹性贝毒标准毒素与离体贝类消化腺组织的混合培养 | 第47-48页 |
| 3.2.4 ATHK 藻毒素与离体贝类消化腺组织的混合培养 | 第48页 |
| 3.2.5 谷胱甘肽还原酶（GR）对毒素转化的影响 | 第48页 |
| 3.2.6 麻痹性贝毒的 LC-MS/MS 分析 | 第48-49页 |
| 3.3 实验结果 | 第49-56页 |
| 3.3.1 麻痹性贝毒标准毒素与离体贝类消化腺组织的混合培养 | 第49-53页 |
| 3.3.2 ATHK 藻毒素与离体贝类消化腺组织的混合培养 | 第53页 |
| 3.3.3 谷胱甘肽还原酶（GR）对麻痹性贝毒转化的影响 | 第53-56页 |
| 3.4 讨论 | 第56-59页 |
| 3.5 小结 | 第59-60页 |
| 4 麻痹性贝毒暴露条件下贝类抗氧化酶系统的响应 | 第60-77页 |
| 4.1 实验试剂和仪器 | 第60-61页 |
| 4.2 实验方法 | 第61-63页 |
| 4.2.1 ATHK 的培养 | 第61页 |
| 4.2.2 贝类滤食 ATHK 的模拟实验 | 第61页 |
| 4.2.3 分析方法 | 第61-63页 |
| 4.3 实验结果 | 第63-72页 |
| 4.3.1 活性氧（ROS）的含量变化 | 第63-64页 |
| 4.3.2 丙二醛（MDA）的含量变化 | 第64-66页 |
| 4.3.3 过氧化物歧化酶（SOD）的活力变化 | 第66-68页 |
| 4.3.4 过氧化氢酶（CAT）的活力变化 | 第68-69页 |
| 4.3.5 谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）的活力变化 | 第69页 |
| 4.3.6 谷胱甘肽还原酶（GR）的活力变化 | 第69页 |
| 4.3.7 谷胱甘肽硫转移酶（GSTs）的活力变化 | 第69-72页 |
| 4.4 讨论 | 第72-76页 |
| 4.5 小结 | 第76-77页 |
| 5 结论 | 第77-78页 |
| 6 创新与展望 | 第78-79页 |
| 6.1 本文创新之处 | 第78页 |
| 6.2 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 个人简历 | 第89页 |
| 在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第89-90页 |
