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趋化因子在猪流行性腹泻病毒感染中的作用

摘要第4-5页
abstract第5-6页
英文缩略表第7-10页
1 引言第10-21页
    1.1 猪流行性腹泻病毒第10-14页
        1.1.1 病毒粒子结构和理化特性第10-11页
        1.1.2 编码的蛋白及其功能第11-12页
        1.1.3 PEDV的培养特性第12页
        1.1.4 PED的流行第12-13页
        1.1.5 PEDV的遗传变异第13-14页
        1.1.6 致病性第14页
    1.2 PEDV的靶细胞第14-15页
        1.2.1 IPEC-J2/IPEC-1细胞第14-15页
        1.2.2 IECs第15页
    1.3 PEDV诱导的免疫应答第15-16页
        1.3.1 全身性免疫应答第15-16页
        1.3.2 固有黏膜免疫应答第16页
    1.4 趋化因子第16-17页
    1.5 研究目的与意义第17页
    1.6 研究内容和技术路线第17-19页
        1.6.1 研究内容第17-19页
        1.6.2 技术路线第19页
    1.7 研究目标第19-21页
2 材料与方法第21-36页
    2.1 材料第21-26页
        2.1.1 细胞及毒株第21页
        2.1.2 实验动物第21页
        2.1.3 主要试剂与试剂盒第21-22页
        2.1.4 流式用抗体第22页
        2.1.5 主要试剂的配制第22-25页
        2.1.6 主要设备第25-26页
    2.2 方法第26-36页
        2.2.1 引物合成第26-28页
        2.2.2 病毒培养与TCID50测定第28-29页
        2.2.3 FQ-PCR标准曲线的建立第29-31页
        2.2.4 PEDV感染仔猪回肠组织中差异表达基因的检测第31-32页
        2.2.5 趋化因子mRNA表达水平的FQ-PCR检测第32页
        2.2.6 体外PEDV感染试验最佳细胞系的筛选第32-34页
        2.2.7 趋化因子对仔猪外周血白细胞趋化作用的检测第34-36页
3 结果与分析第36-69页
    3.1 FQ-PCR标准曲线第36-39页
        3.1.1 趋化因子FQ-PCR标准曲线第36-39页
        3.1.2 PEDVN基因FQ-PCR标准曲线第39页
    3.2 感染仔猪回肠组织中趋化因子差异表达基因第39-46页
        3.2.1 RNA的质量第39-40页
        3.2.2 样品主成分分析第40-41页
        3.2.3 火山图第41页
        3.2.4 GO分析第41-43页
        3.2.5 KEGGPathway富集分析第43-45页
        3.2.6 趋化因子差异基因第45-46页
    3.3 仔猪回肠组织中趋化因子mRNA的表达量第46-49页
        3.3.1 FQ-PCR检测第46-48页
        3.3.2 FQ-PCR检测结果与表达谱芯片检测结果对比第48-49页
    3.4 PEDV体外最佳感染细胞系的确定第49-60页
        3.4.1 病毒核酸载量第49-50页
        3.4.2 病毒抗原第50-53页
        3.4.3 TCID_(50)第53页
        3.4.4 趋化因子mRNA的表达水平第53-58页
        3.4.5 感染细胞上清中的趋化因子浓度第58-60页
    3.5 MCP-1、CXCL9、CXCL13对白细胞的趋化作用第60-69页
        3.5.1 趋化因子高抑制活性siRNA第60-63页
        3.5.2 MCP-1、CXCL9、CXCL13对仔猪外周血白细胞的趋化作用第63-69页
4 讨论第69-72页
    4.1 PEDV感染仔猪后回肠组织中趋化因子mRNA的表达水平第69页
    4.2 PEDV体外感染最佳细胞系的选择第69-71页
    4.3 趋化因子对仔猪外周血白细胞的趋化作用第71-72页
6 结论第72-73页
参考文献第73-80页
在读期间发表的学术论文与获得的研究成果第80-81页
作者简介第81-82页
致谢第82-84页
中文详细摘要第84-85页

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