| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第10-15页 |
| 1 实验材料与方法 | 第15-26页 |
| 1.1 实验材料与设备 | 第15-17页 |
| 1.1.1 实验试剂及耗材(表 1.1.1) | 第15页 |
| 1.1.2 细胞培养使用试剂 | 第15-16页 |
| 1.1.3 实验仪器及设备(表 1.1.3) | 第16-17页 |
| 1.2 主要试剂配制方法 | 第17-19页 |
| 1.2.1 人工脑脊液(ACSF)配方(表 1.2.1) | 第17页 |
| 1.2.2 细胞培养常用配方 | 第17-18页 |
| 1.2.3 Aβ_(1-42)寡聚体的配制及鉴定 | 第18-19页 |
| 1.2.4 其他药品配制方法 | 第19页 |
| 1.3 实验分组 | 第19-20页 |
| 1.3.1 电生理实验动物分组 | 第19页 |
| 1.3.2 行为学实验动物分组 | 第19页 |
| 1.3.3 培养的海马神经元分组 | 第19-20页 |
| 1.4 电生理实验方法 | 第20-21页 |
| 1.4.1 大鼠海马脑片制备 | 第20页 |
| 1.4.2 电生理记录 | 第20-21页 |
| 1.5 行为学实验方法 | 第21-23页 |
| 1.5.1 行为学实验流程(图 1.2) | 第21-22页 |
| 1.5.2 行为学动物模型的建立 | 第22页 |
| 1.5.3 新物体识别实验 | 第22-23页 |
| 1.5.4 Morris 水迷宫实验 | 第23页 |
| 1.6 细胞学实验方法 | 第23-25页 |
| 1.6.1 质粒 DNA 的转化与提取 | 第23-24页 |
| 1.6.2 大鼠海马神经元培养 | 第24页 |
| 1.6.3 大鼠海马神经元转染 | 第24页 |
| 1.6.4 激光共聚焦系统成像 | 第24-25页 |
| 1.7 给药方式 | 第25页 |
| 1.8 统计方法 | 第25-26页 |
| 2 实验结果 | 第26-43页 |
| 2.1 Aβ_(1-42)寡聚体500nM 抑制大鼠海马DG 区LTP | 第26-27页 |
| 2.2 高剂量 B3C 增强大鼠海马 DG 区 LTP | 第27-29页 |
| 2.3 B3C 能逆转 Aβ_(1-42)寡聚体在大鼠海马DG 区诱导的LTP 抑制 | 第29-33页 |
| 2.4 B3C 在新物体识别实验中改善 Aβ_(1-42)诱导的动物认知功能障碍 | 第33-36页 |
| 2.5 B3C 在水迷宫实验中改善 Aβ_(1-42)诱导的动物空间学习记忆损伤 | 第36-40页 |
| 2.6 B3C 在大鼠海马神经元中逆转 Aβ_(1-42)减少的树突丝密度 | 第40-42页 |
| 2.7 Aβ_(1-42)或(和)B3C 在大鼠海马神经元中不影响树突丝的长度 | 第42-43页 |
| 3 讨论 | 第43-47页 |
| 4 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 附录A 缩略词表(Abbreviation) | 第54-55页 |
| 附录B 文献综述 | 第55-61页 |
| 在学研究成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
