摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
第一章 前言 | 第13-27页 |
1.1 枇杷果肉色素积累与基因调控 | 第13-15页 |
1.2 枇杷糖分积累与基因调控 | 第15-18页 |
1.3 抗坏血酸研究 | 第18-21页 |
1.4 高通量RNA测序技术在枇杷上的应用 | 第21-23页 |
1.5 基于高通量测序的分子标记发掘 | 第23-24页 |
1.6 立题意义及主要研究内容 | 第24-27页 |
第二章 红肉枇杷和白肉枇杷果实成熟不同阶段的比较转录组研究 | 第27-50页 |
2.1 材料和方法 | 第28-35页 |
2.1.1 材料 | 第28-29页 |
2.1.2 方法 | 第29-35页 |
2.2 结果与分析 | 第35-46页 |
2.2.1 RNA完整度和浓度检测 | 第35-37页 |
2.2.2 转录组测序原始数据分析 | 第37页 |
2.2.3 转录组数据组装 | 第37-38页 |
2.2.4 Unigenes的功能聚类 | 第38-39页 |
2.2.5 差异表达Unigenes的鉴定 | 第39-41页 |
2.2.6 差异表达Unigenes的GO聚类分析 | 第41-43页 |
2.2.7 差异表达Unigenes的KEGG分析 | 第43-44页 |
2.2.8 类胡萝卜素代谢通路分析 | 第44-45页 |
2.2.9 EST-SSR标记和SNP位点发掘 | 第45-46页 |
2.3 讨论 | 第46-50页 |
2.3.1 转录组测序是揭示无参物种内在分子调控网络的有效手段 | 第46-47页 |
2.3.2 红肉枇杷和白肉枇杷果实间碳水化合物代谢发生显著差异 | 第47-48页 |
2.3.3 类胡萝卜素代谢途径受阻造成了白肉枇杷果肉颜色的缺失 | 第48-49页 |
2.3.4 大量EST-SSR和SNP分子标记的研发为今后枇杷遗传改良育种奠定良好的基础 | 第49-50页 |
第三章 枇杷EjSWEET15基因的克隆与表达分析 | 第50-66页 |
3.1 材料和方法 | 第51-56页 |
3.1.1 材料 | 第51-52页 |
3.1.2 方法 | 第52-56页 |
3.2 结果与分析 | 第56-63页 |
3.2.1 白肉枇杷和红肉枇杷果实发育不同时期的蔗糖与果糖含量差异对比 | 第56-57页 |
3.2.2 RNA完整度和浓度检测 | 第57-58页 |
3.2.3 EjSWEET15基因全长克隆及生物信息分析 | 第58-59页 |
3.2.4 EjSWEET15推导的氨基酸序列比对及进化树构建 | 第59-61页 |
3.2.5 EjSWEET15基因的表达模式分析 | 第61-62页 |
3.2.6 EjSWEET15基因在白肉枇杷和红肉枇杷间的核苷酸多态性分析 | 第62-63页 |
3.3 讨论 | 第63-66页 |
3.3.1 EjSWEET15基因编码的蛋白属于植物典型的SWEET糖转运蛋白家族成员 | 第63-64页 |
3.3.2 EjSWEET15基因在红肉枇杷和白肉枇杷果实间差异表达可能导致了两种枇杷果实可溶性糖含量发生变化 | 第64-66页 |
第四章 枇杷EjAO基因的克隆与表达分析 | 第66-76页 |
4.1 材料和方法 | 第67-69页 |
4.1.1 材料 | 第67页 |
4.1.2 方法 | 第67-69页 |
4.2 结果与分析 | 第69-73页 |
4.2.1 EjAO基因全长克隆及生物信息分析 | 第69-70页 |
4.2.2 EjAO推导的氨基酸序列比对及进化树构建 | 第70-71页 |
4.2.3 EjAO基因的表达模式分析 | 第71-72页 |
4.2.4 白肉枇杷和红肉枇杷EjAO基因的核苷酸多态性分析 | 第72-73页 |
4.3 讨论 | 第73-76页 |
4.3.1 活性氧是生物体新陈代谢的副产物,与衰老密切相关 | 第73-74页 |
4.3.2 AO是生物体内抗氧化系统的关键成员,EjAO在两种枇杷果实间的差异表达可能是造成红肉枇杷和白肉枇杷贮存品质不同的原因 | 第74-76页 |
第五章 创新点与展望 | 第76-78页 |
5.1 创新点 | 第76页 |
5.2 展望 | 第76-78页 |
参考文献 | 第78-93页 |
致谢 | 第93-95页 |
缩略词表 | 第95-96页 |
攻读博士学位期间学术成果完成情况 | 第96-97页 |
附表 | 第97-111页 |