摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
符号说明 | 第11-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-22页 |
1.1 结肠炎与结直肠癌 | 第12-13页 |
1.2 结肠炎相关的结肠癌机制 | 第13-16页 |
1.2.1 结肠炎引发的遗传学改变以及结肠癌关键基因 | 第13-14页 |
1.2.2 凝血功能异常 | 第14页 |
1.2.3 炎症微环境 | 第14-16页 |
1.3 抗结肠癌药物 | 第16-17页 |
1.4 结肠癌相关动物模型 | 第17-19页 |
1.5 多糖的抗肿瘤活性 | 第19-20页 |
1.6 研究背景及意义 | 第20-22页 |
第二章 材料与方法 | 第22-32页 |
2.1 实验动物 | 第22页 |
2.2 材料与试剂 | 第22-23页 |
2.3 仪器 | 第23-24页 |
2.4 实验方法 | 第24-32页 |
2.4.1 黑根霉胞外多糖EPS1-1提取及纯化 | 第24页 |
2.4.2 诱导性结肠癌模型的建立 | 第24-25页 |
2.4.3 小鼠体征变化 | 第25页 |
2.4.4 胸腺指数及脾脏指数测定 | 第25页 |
2.4.5 结肠形态观察 | 第25页 |
2.4.6 结肠组织HE染色病理分析 | 第25-26页 |
2.4.7 免疫组织化学染色病理分析 | 第26页 |
2.4.8 qPCR检测结肠癌相关基因的表达水平 | 第26-27页 |
2.4.9 Western-blot分析结肠癌相关蛋白的表达 | 第27-29页 |
2.4.10 TUNEL染色检测结肠癌细胞的凋亡 | 第29页 |
2.4.11 血清中细胞因子的检测 | 第29-30页 |
2.4.12 血常规测定 | 第30页 |
2.4.13 小鼠颈下组织与肠组织瘤子HE染色病理分析 | 第30页 |
2.4.14 数据统计 | 第30-32页 |
第三章 结果与分析 | 第32-50页 |
3.1 EPS1-1对小鼠体征变化的影响 | 第32-33页 |
3.2 EPS1-1对模型小鼠结肠和胃组织炎症的影响 | 第33-34页 |
3.3 EPS1-1对模型小鼠结肠肿瘤个数和大小的影响 | 第34-35页 |
3.4 模型小鼠结肠组织HE染色分析 | 第35-36页 |
3.5 EPS1-1对结肠癌早期指标COX-2表达的影响 | 第36-37页 |
3.6 EPS1-1对Wnt/β-catenin信号通路关键蛋白表达的影响 | 第37-39页 |
3.7 EPS1-1对结肠癌增殖指标Ki-67和PCNA表达的抑制 | 第39-41页 |
3.8 EPS1-1对结肠癌组织细胞凋亡的影响 | 第41-42页 |
3.9 EPS1-1对凋亡相关基因和蛋白表达的影响 | 第42-43页 |
3.10 巨噬细胞表面标志物CD68和F4/80免疫组化分析 | 第43-44页 |
3.11 EPS1-1对核转位因子NF-κB的影响 | 第44-45页 |
3.12 EPS1-1对炎性细胞因子的影响 | 第45-46页 |
3.13 EPS1-1对模型小鼠免疫器官的影响 | 第46-47页 |
3.14 EPS1-1对模型小鼠血常规的影响 | 第47-48页 |
3.15 AOM/DSS诱导性结肠癌引发的并发症 | 第48-50页 |
第四章 讨论 | 第50-56页 |
第五章 小结 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-68页 |
致谢 | 第68-70页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第70-71页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第71页 |