中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
1 引言 | 第14-23页 |
1.1 食用菌多糖 | 第14页 |
1.2 食用菌多糖的提取方法 | 第14-16页 |
1.2.1 水提醇沉法 | 第14-15页 |
1.2.2 酸碱浸提法 | 第15页 |
1.2.3 酶液浸提法 | 第15页 |
1.2.4 超声波法 | 第15-16页 |
1.2.5 微波法 | 第16页 |
1.2.6 超临界流体萃取技术 | 第16页 |
1.3 食用菌多糖的生物活性 | 第16-18页 |
1.3.1 免疫调节 | 第16-17页 |
1.3.2 抗氧化和抗衰老 | 第17页 |
1.3.3 抗肿瘤 | 第17页 |
1.3.4 降血脂 | 第17页 |
1.3.5 降血糖 | 第17-18页 |
1.4 食用菌多糖的分离纯化 | 第18页 |
1.5 杨树菇的研究状况 | 第18-20页 |
1.6 衰老 | 第20-21页 |
1.6.1 衰老学说 | 第20页 |
1.6.2 建立衰老模型的常用方法 | 第20-21页 |
1.6.2.1 自然衰老模型 | 第20-21页 |
1.6.2.2 O_3损伤致衰老模型 | 第21页 |
1.6.2.3 快速老化模型 | 第21页 |
1.6.2.4 D-半乳糖致衰老模型 | 第21页 |
1.7 本文研究的目的及意义 | 第21-23页 |
2 材料和方法 | 第23-32页 |
2.1 试验菌种 | 第23页 |
2.2 培养基 | 第23页 |
2.3 主要试剂及仪器设备 | 第23-24页 |
2.3.1 仪器设备 | 第23-24页 |
2.3.2 主要试剂 | 第24页 |
2.4 试验方法 | 第24-32页 |
2.4.1 杨树菇菌丝体发酵培养 | 第24-25页 |
2.4.1.1 固体培养 | 第24页 |
2.4.1.2 液体培养 | 第24-25页 |
2.4.2 三种菌丝体多糖的提取 | 第25页 |
2.4.2.1 杨树菇菌丝体发酵培养 | 第25页 |
2.4.2.2 酸法、碱法提取杨树菇菌丝体多糖 | 第25页 |
2.4.2.3 酶法提取杨树菇菌丝体多糖 | 第25页 |
2.4.3 多糖含量测定 | 第25-26页 |
2.4.4 杨树菇菌丝体多糖的分离纯化 | 第26-27页 |
2.4.4.1 去蛋白—Sevag法 | 第26-27页 |
2.4.4.2 去色素—H_2O_2脱色法 | 第27页 |
2.4.5 杨树菇菌丝体多糖的单糖组成分析 | 第27-28页 |
2.4.6 杨树菇菌丝体多糖的体外抗氧化能力测定 | 第28-29页 |
2.4.6.1 还原力—普鲁士蓝法 | 第28页 |
2.4.6.2 清除羟基自由基的能力—Fenton法 | 第28-29页 |
2.4.6.3 清除DPPH自由基的能力—DPPH分析法 | 第29页 |
2.4.7 杨树菇菌丝体多糖的体内抗氧化和抗衰老能力测定 | 第29-31页 |
2.4.8 数据统计分析 | 第31-32页 |
3 结果与分析 | 第32-50页 |
3.1 三种多糖的单糖组成分析 | 第32-33页 |
3.2 三种多糖的体外抗氧化能力 | 第33-35页 |
3.2.1 还原力 | 第33-34页 |
3.2.2 对羟基自由基的清除能力 | 第34-35页 |
3.2.3 对DPPH自由基的清除能力 | 第35页 |
3.3 三种多糖的体内抗氧化和抗衰老活性 | 第35-50页 |
3.3.1 急性毒性试验结果 | 第35-36页 |
3.3.2 三种多糖的体内抗氧化活性 | 第36-42页 |
3.3.2.1 对小鼠器官组织SOD活性的影响 | 第36-37页 |
3.3.2.2 对小鼠器官组织的CAT活性的影响 | 第37-38页 |
3.3.2.3 对小鼠器官组织的GPx活性的影响 | 第38-40页 |
3.3.2.4 对小鼠器官组织的T-AOC活性的影响 | 第40-41页 |
3.3.2.5 对小鼠器官组织的MDA含量的影响 | 第41-42页 |
3.3.3 对衰老小鼠皮肤中羟脯氨酸的含量的影响 | 第42-43页 |
3.3.4 对衰老小鼠的血清指标的影响 | 第43-47页 |
3.3.5 对衰老小鼠对肝脏、肾脏病理学变化的影响 | 第47-50页 |
3.3.5.1 小鼠肝脏组织病理学观察 | 第47页 |
3.3.5.2 小鼠肾脏组织病理学观察 | 第47-50页 |
4 讨论 | 第50-52页 |
5 尚待开展的工作 | 第52-53页 |
6 结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
攻读学位期间发表的论文及成果 | 第61页 |