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拟南芥光信号系统关键基因CRY1、CRY2和COP1启动子的表达模式分析

摘要第4-5页
ABSTRACT第5-6页
一 绪论第12-33页
    1 CRY 的发现第12-13页
    2 CRY1 和CRY2 的生理功能第13-16页
        2.1 CRY 在光形态建成中的作用第13-14页
        2.2 CRY 对于开花时间的调节第14-15页
        2.3 CRY 在生物钟调节中的作用第15页
        2.4 CRY 对于气孔开放的调节作用第15-16页
        2.5 CRY 对于气孔发育的调控第16页
        2.6 CRY 在植物发育中的其他作用第16页
    3 CRY1 和CRY2 的分子结构第16-22页
        3.1 光裂解酶/隐花色素基因家族第17-18页
        3.2 CRY 的N 端结构域(CNT)及其功能第18-19页
        3.3 CRY 的C 端结构域(CCT)及其功能第19-20页
        3.4 CRY 蛋白的细胞定位第20页
        3.5 CRY 蛋白的降解第20-21页
        3.6 CRY 蛋白的磷酸化第21-22页
    4 CRY 与其他蛋白相互作用及其信号转导过程第22-24页
        4.1 CRY 与COP1 的相互作用第22-24页
        4.2 CRY 与PHY 的相互作用第24页
        4.3 CRY 与ZTL/LKP1/AD01 的相互作用第24页
    5 COP1 的分子结构和功能第24-30页
        5.1 COP1 的分子结构第25-26页
        5.2 泛素化蛋白降解途径第26页
        5.3 COP1 作为E3 连接酶行使其功能第26-28页
        5.4 COP1 在哺乳动物细胞中的功能第28-29页
        5.5 COP1 的细胞定位第29-30页
    6 COP1 的调控因子第30-32页
        6.1 SPA 家族蛋白第30-31页
        6.2 COP/DET/FUS 基因簇第31-32页
        6.3 其他的 COP1 调节因子第32页
    7 本研究的意义与展望第32-33页
二材料与方法第33-47页
    1 植物材料第33页
    2 质粒、菌株、试剂盒与药品第33-34页
        2.1 质粒载体第33-34页
        2.2 菌株第34页
        2.3 抗生素第34页
        2.4 其他第34页
    3 实验方法第34-47页
        3.1 PCR 反应第35-36页
        3.2 大肠杆菌转化第36-40页
        3.3 农杆菌转化第40-41页
        3.4 拟南芥种植与转化第41-44页
        3.5 拟南芥基因组 DNA 的提取第44-45页
        3.6 GUS 组织化学染色第45-47页
三结果与分析第47-66页
    1 CRY1、CRY2 和COP1 在白光与黑暗下表达模式第47-56页
        1.1 CRY1 基因的表达模式第47-50页
        1.2 CRY2 基因的表达模式第50-53页
        1.3 COP1 基因的表达模式第53-56页
    2 拟南芥植株各部位 CRY1、CRY2 和 COP1 启动子表达模式第56-63页
        2.1 不同发育阶段叶片中CRY1、CRY2 和COP1 启动子表达模式第57-60页
        2.2 花器官和果实中 CRY1、CRY2 和 COP1 启动子表达模式第60-63页
    3 cry1 突变体背景下COP1 启动子的表达模式第63-64页
    4 cop1 突变体背景下CRY1 启动子的表达模式第64-66页
四结论第66-69页
    1 CRY1、CRY2 和COP1 基因的表达模式不受光照条件的调控第66页
    2 CRY1、CRY2 和COP1 基因在野生型拟南芥植株的叶片和花器官中广泛表达第66-67页
    3 拟南芥 CRY1 与 COP1 基因在转录水平上缺乏明显的相互调控作用第67-69页
参考文献第69-76页
附录第76-77页
致谢第77-78页
攻读学位期间发表的学术论文目录第78-81页
上海交通大学学位论文答辩决议书第81页

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