| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-15页 |
| 一、靶向EGFR的小分子干扰RNA的构建和表达 | 第15-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第16-26页 |
| 1.1.1 研究对象 | 第16页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第17页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第17-26页 |
| 1.2 结果 | 第26-30页 |
| 1.2.1 重组质粒pSilencer2.1-shRNA-EGFR酶切鉴定结果 | 第26-27页 |
| 1.2.2 提取的总RNA质量鉴定 | 第27页 |
| 1.2.3 HLEs转染效率的确定 | 第27-28页 |
| 1.2.4 免疫荧光检测结果 | 第28-29页 |
| 1.2.5 western-blot检测结果 | 第29-30页 |
| 1.2.6 Real-time RT-PCR结果 | 第30页 |
| 1.3 讨论 | 第30-34页 |
| 1.3.1 RNAi技术的工作机制及其特点 | 第30-32页 |
| 1.3.2 靶基因和载体系统的选择 | 第32-33页 |
| 1.3.3 构建载体pSilencer2.1-shRNA-EGFR的抑制效果 | 第33-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 二、si-EGFR对HLE增殖的影响 | 第35-49页 |
| 2.1 对象和方法 | 第36-39页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第36页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第36-37页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第37-39页 |
| 2.2 结果 | 第39-44页 |
| 2.2.1 MTS结果 | 第39-42页 |
| 2.2.2 细胞生长曲线 | 第42-43页 |
| 2.2.3 流式细胞检测结果 | 第43-44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-48页 |
| 2.3.1 PCO的发病机制 | 第44-46页 |
| 2.3.2 PCO的后果及其治疗方法 | 第46-47页 |
| 2.3.3 EGFR敲除对HLEs细胞的影响 | 第47-48页 |
| 2.4 小结 | 第48-49页 |
| 三、EGF及其受体通路的阻断对HLEs影响的研究 | 第49-61页 |
| 3.1 对象和方法 | 第49-52页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第49页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第49-50页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第50页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第50-52页 |
| 3.2 结果 | 第52-56页 |
| 3.2.1 适宜浓度重组EGF的筛选结果 | 第52-54页 |
| 3.2.2 EGF及其受体通路的阻断对HLEs细胞的影响 | 第54-56页 |
| 3.3 讨论 | 第56-60页 |
| 3.3.1 EGF对HLEs的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.2 EGF-EGFR通路对HLEs细胞的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.3 问题和展望 | 第58-60页 |
| 3.4 小结 | 第60-61页 |
| 全文结论 | 第61-63页 |
| 论文创新点 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-75页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第75-76页 |
| 综述 RNA干扰及其在眼科的研究应用进展 | 第76-90页 |
| 综述参考文献 | 第85-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
