| 缩略语 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 目录 | 第11-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-34页 |
| 1 甲壳素/壳聚糖理化性质概述 | 第16-18页 |
| 1.1 甲壳素理化性质 | 第16-17页 |
| 1.2 壳聚糖的理化性质 | 第17-18页 |
| 2 甲壳素/壳聚糖的改性 | 第18-24页 |
| 2.1 酰化反应 | 第18-19页 |
| 2.2 酯化反应 | 第19-20页 |
| 2.2.1 硫酸酯 | 第19页 |
| 2.2.2 黄原酸酯 | 第19-20页 |
| 2.2.3 磷酸酯 | 第20页 |
| 2.2.4 硝酸酯 | 第20页 |
| 2.3 醚化反应 | 第20-21页 |
| 2.4 西佛碱反应 | 第21页 |
| 2.5 烷基化反应 | 第21-22页 |
| 2.6 季铵化反应 | 第22页 |
| 2.7 氧化反应 | 第22-23页 |
| 2.8 水解反应 | 第23页 |
| 2.9 接枝共聚反应 | 第23-24页 |
| 2.10 交联反应 | 第24页 |
| 3 甲壳素/壳聚糖及其衍生物的应用 | 第24-28页 |
| 3.1 在食品工业中的应用 | 第24-25页 |
| 3.2 在轻纺工业中的应用 | 第25-26页 |
| 3.3 在农业中的应用 | 第26页 |
| 3.4 在医药卫生方面的应用 | 第26-28页 |
| 4 甲壳素、壳聚糖硫酸酯概述 | 第28-32页 |
| 4.1 甲壳素、壳聚糖硫酸酯制备方法 | 第28-29页 |
| 4.1.1 磺化体系选择 | 第28-29页 |
| 4.1.2 经磺化剂预处理后的壳聚糖 | 第29页 |
| 4.2 甲壳素、壳聚糖硫酸酯的生物活性 | 第29-32页 |
| 4.2.1 抗凝血活性 | 第29-31页 |
| 4.2.2 抗血栓活性 | 第31页 |
| 4.2.3 抗氧化活性 | 第31页 |
| 4.2.4 抗病毒活性 | 第31-32页 |
| 4.2.5 抗肿瘤活性 | 第32页 |
| 5 立题依据 | 第32-34页 |
| 第二章 S-CT、S-CTS 材料合成纯化及理化性质测定 | 第34-41页 |
| 1 材料、试剂与仪器 | 第34-35页 |
| 1.1 材料与主要试剂 | 第34页 |
| 1.2 主要仪器 | 第34-35页 |
| 2 实验方法 | 第35-38页 |
| 2.1 S-CTS 、S-CT 材料合成及纯化 | 第35-36页 |
| 2.2 S-CT、S-CTS 理化性质测定 | 第36-38页 |
| 2.2.1 S-CT、S-CTS 水分测定 | 第36页 |
| 2.2.2 S-CT、S-CTS 灰分测定 | 第36页 |
| 2.2.3 pH 值测定 | 第36页 |
| 2.2.4 等电点测定 | 第36-37页 |
| 2.2.5 旋转黏度测定 | 第37页 |
| 2.2.6 取代度测定 | 第37页 |
| 2.2.7 脱乙酰度测定 | 第37-38页 |
| 2.2.8 红外光谱 | 第38页 |
| 2.2.9 分子量测定 | 第38页 |
| 3 结果与讨论 | 第38-40页 |
| 3.1 S-CT、S-CTS 主要理化性质 | 第38-39页 |
| 3.2 红外光谱 | 第39-40页 |
| 4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 S-CT、S-CTS 的生物相容性和生物降解性评价 | 第41-57页 |
| 1 材料、试剂与仪器 | 第41-42页 |
| 1.1 材料与主要试剂 | 第41-42页 |
| 1.2 主要仪器 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42-45页 |
| 2.1 溶血率测定 | 第42-43页 |
| 2.2 兔皮内反应实验 | 第43页 |
| 2.3 S-CT、S-CTS 胶体组织相容性 | 第43-44页 |
| 2.4 S-CT、S-CTS 膜片组织相容性 | 第44页 |
| 2.5 组织切片 | 第44-45页 |
| 2.6 HE 染色 | 第45页 |
| 3 结果与讨论 | 第45-56页 |
| 3.1 溶血率测定 | 第45-46页 |
| 3.2 皮内刺激反应 | 第46页 |
| 3.3 胶体溶液组织相容性 | 第46-50页 |
| 3.4 膜片组织相容性 | 第50-56页 |
| 4 本章小结 | 第56-57页 |
| 第四章 S-CT、S-CTS 的生物学功能 | 第57-79页 |
| 1 材料、试剂与仪器 | 第57-58页 |
| 1.1 材料与主要试剂 | 第57-58页 |
| 1.2 主要仪器 | 第58页 |
| 2 实验方法 | 第58-62页 |
| 2.1 全血凝血时间测定 | 第58页 |
| 2.2 对人脐静脉血管内皮细胞 HUVEC 生长的影响 | 第58-59页 |
| 2.3 对肿瘤细胞生长的抑制作用 | 第59-62页 |
| 2.3.1 对人宫颈癌细胞 HeLa 生长的抑制作用 | 第59-60页 |
| 2.3.2 对人喉表皮样癌细胞 HEp-2 生长的抑制作用 | 第60-61页 |
| 2.3.3 对人胃癌细胞 SGC-7901 生长的抑制作用 | 第61-62页 |
| 3 结果及分析 | 第62-77页 |
| 3.0 全血凝血时间测定 | 第62-63页 |
| 3.1 对 HUVEC 细胞生长的促进作用 | 第63-65页 |
| 3.2 对 HeLa 细胞生长的抑制作用 | 第65-69页 |
| 3.3 对 HEp-2 细胞生长的抑制作用 | 第69-73页 |
| 3.4 对 SGC-7901 细胞生长的抑制作用 | 第73-77页 |
| 4 本章小结 | 第77-79页 |
| 全文总结 | 第79页 |
| 结论 | 第79-80页 |
| 论文的创新点 | 第80页 |
| 论文存在的不足 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
| 个人简历 | 第88页 |
| 发表的学术论文 | 第88-89页 |
