| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第14-26页 |
| 1 壳聚糖简介 | 第14-20页 |
| 1.1 存在形式 | 第14页 |
| 1.2 壳聚糖和甲壳素的加工 | 第14-15页 |
| 1.3 壳聚糖溶解与降解 | 第15-16页 |
| 1.4 壳聚糖的抑菌性 | 第16-17页 |
| 1.4.1 影响壳聚糖抑菌性的因素 | 第16-17页 |
| 1.4.2 壳聚糖抑菌性作用原理 | 第17页 |
| 1.5 壳聚糖的生物活性 | 第17-20页 |
| 1.5.1 壳聚糖医用敷料 | 第17-18页 |
| 1.5.2 壳聚糖在药物载体中的应用 | 第18-19页 |
| 1.5.3 壳聚糖在生物和组织工程材料中的应用 | 第19页 |
| 1.5.4 壳聚糖在吸附剂中的应用 | 第19-20页 |
| 1.6 壳聚糖在保健领域的应用 | 第20页 |
| 2 离子液体简介 | 第20-25页 |
| 2.1 离子液体定义 | 第20-21页 |
| 2.2 离子液体的特性 | 第21-22页 |
| 2.3 离子液的合成与纯化 | 第22-23页 |
| 2.4 离子液在作为溶剂方面的应用 | 第23-25页 |
| 2.4.1 纤维素在离子液中的溶解 | 第23-24页 |
| 2.4.2 离子液中水含量对溶解性能的影响 | 第24页 |
| 2.4.3 甲壳素和壳聚糖在离子液中的溶解 | 第24-25页 |
| 3 本论文的选题依据以及研究内容 | 第25-26页 |
| 3.1 选题依据 | 第25页 |
| 3.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 第一章 不同溶剂对壳聚糖的溶解及析出 | 第26-34页 |
| 0 引言 | 第26页 |
| 1 材料 | 第26-27页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第26-27页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第27页 |
| 2 方法 | 第27-29页 |
| 2.1 GlyCl 的合成 | 第27页 |
| 2.2 离子液体 1-乙基-3-甲基咪唑醋酸盐（EmimAc）预处理 | 第27页 |
| 2.3 壳聚糖在醋酸、GlyCl、EmimAc 中溶解及析出 | 第27-28页 |
| 2.3.1 壳聚糖在醋酸溶液中溶解和析出 | 第27-28页 |
| 2.3.2 壳聚糖在 GlyCl 中溶解和析出 | 第28页 |
| 2.3.3 壳聚糖在 EmimAc 中溶解和析出 | 第28页 |
| 2.4 再生壳聚糖 H、G、E 与原壳聚糖（编号 C）分子量以及脱乙酰度比较 | 第28-29页 |
| 2.4.1 壳聚糖分子量测定 | 第28页 |
| 2.4.2 壳聚糖脱乙酰度测定 | 第28-29页 |
| 2.5 再生壳聚糖 H、G、E 与原壳聚糖（编号 C）红外图谱分析 | 第29页 |
| 2.6 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 广角 X-射线衍射分析 | 第29页 |
| 3 结果与讨论 | 第29-32页 |
| 3.1 壳聚糖在不同溶剂中的溶解及再生后壳聚糖分子量和脱乙酰度的测定 | 第29-31页 |
| 3.1.1 壳聚糖在不同溶剂中的溶解原理 | 第29-30页 |
| 3.1.2 再析出壳聚糖分子量及脱乙酰度变化 | 第30-31页 |
| 3.2 红外光谱检测 | 第31-32页 |
| 3.3 X 射线晶体衍射（WAXD）结果分析 | 第32页 |
| 4 小结 | 第32-34页 |
| 第二章 不同溶剂溶解后析出壳聚糖的抑菌性研究 | 第34-40页 |
| 0 引言 | 第34页 |
| 1 材料 | 第34-35页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第34页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第34-35页 |
| 2 方法 | 第35-36页 |
| 2.1 培养基的配制 | 第35页 |
| 2.2 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 对于大肠杆菌 E.coli 抑制作用的研究 | 第35-36页 |
| 2.2.1 大肠杆菌活化 | 第35页 |
| 2.2.2 再析出壳聚糖的抑菌实验 | 第35-36页 |
| 2.2.2.1 对照组的制备 | 第35-36页 |
| 2.2.2.2 再生壳聚糖抑菌率的测定 | 第36页 |
| 2.3 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 对大肠杆菌 E.coli 抑制作用的电镜观察 | 第36页 |
| 3 结果与讨论 | 第36-39页 |
| 3.1 涂布法获得大肠杆菌菌落 | 第36-37页 |
| 3.2 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 对于大肠杆菌 E.coli 的抑制率 | 第37-38页 |
| 3.3 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 对大肠杆菌 E.coli 抑制作用电镜观察结果 | 第38-39页 |
| 4 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 不同溶剂溶解后析出壳聚糖的生物性能研究 | 第40-48页 |
| 0 引言 | 第40页 |
| 1 材料 | 第40-41页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第40页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第40-41页 |
| 2 方法 | 第41-43页 |
| 2.1 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 的血液相容性 | 第41页 |
| 2.2 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 的内毒素含量测试 | 第41-42页 |
| 2.2.1 内毒素实验 | 第42页 |
| 2.3 再生壳聚糖 H、G、E、C 以及离子液（EmimAc）细胞毒性检测 | 第42-43页 |
| 2.3.1 小鼠成纤维细胞（MEF）原代培养与传代培养 | 第42页 |
| 2.3.2 再生后壳聚糖浸提液以及离子液浸提液的制备 | 第42-43页 |
| 2.3.3 MTT 法测细胞的相对增值率 | 第43页 |
| 3 结果与讨论 | 第43-47页 |
| 3.1 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 的血液相容性结果 | 第43-44页 |
| 3.2 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 的内毒素含量测试结果 | 第44-45页 |
| 3.3 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 细胞毒性分析 | 第45-47页 |
| 3.3.1 小鼠成纤维细胞（MEF）传代细胞特征 | 第45页 |
| 3.3.2 离子液（EmimAc）细胞毒性测试结果 | 第45-46页 |
| 3.3.3 再生壳聚糖 H、G、E 与 C 细胞毒性测试结果 | 第46-47页 |
| 4 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 不同溶剂溶解的壳聚糖在储存过程中降解行为研究 | 第48-53页 |
| 0 引言 | 第48页 |
| 1 材料 | 第48-49页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第48页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第48-49页 |
| 2 方法 | 第49-50页 |
| 2.1 醋酸溶液、GlyCl 溶液、醋酸-甘氨酸缓冲液的配制 | 第49页 |
| 2.2 不同 pH 值的醋酸-醋酸钠缓冲液的配制 | 第49页 |
| 2.3 不同溶剂对壳聚糖的溶解及析出 | 第49页 |
| 2.4 一点法测壳聚糖分子量 | 第49-50页 |
| 3 结果与讨论 | 第50-52页 |
| 3.1 醋酸溶液、GlyCl 溶液、醋酸-甘氨酸缓冲液对壳聚糖的降解 | 第50-51页 |
| 3.2 醋酸-醋酸钠缓冲液配制 | 第51-52页 |
| 3.3 不同缓冲液对壳聚糖的降解 | 第52页 |
| 4 小结 | 第52-53页 |
| 全文总结 | 第53-54页 |
| 创新点 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 个人简历 | 第62页 |
| 所获荣誉及奖励 | 第62-63页 |
| 发表的学术论文 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
