石油降解菌的优化培养及复配
摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 文献综述 | 第10-22页 |
1.1 引言 | 第10页 |
1.2 石油的组成 | 第10-11页 |
1.3 石油污染的危害 | 第11-12页 |
1.4 石油污染水体的修复方法 | 第12-13页 |
1.4.1 气浮法 | 第12页 |
1.4.2 吸附法 | 第12页 |
1.4.3 絮凝沉淀法 | 第12-13页 |
1.5 石油烃类污染土壤的修复方法 | 第13页 |
1.5.1 土壤洗涤法 | 第13页 |
1.5.2 热处理法 | 第13页 |
1.5.3 隔离法 | 第13页 |
1.5.4 萃取法 | 第13页 |
1.6 石油污染的生物修复 | 第13-16页 |
1.6.1 生物修复的概念 | 第13-14页 |
1.6.2 生物表面活性剂 | 第14页 |
1.6.3 微生物对石油烃类的降解机理 | 第14-16页 |
1.7 石油烃降解菌的种类 | 第16-17页 |
1.8 石油降解微生物的生长因素 | 第17-19页 |
1.8.1 pH值 | 第17页 |
1.8.2 温度 | 第17-18页 |
1.8.3 盐浓度 | 第18页 |
1.8.4 油浓度 | 第18页 |
1.8.5 N、P营养盐 | 第18页 |
1.8.6 原油物理状态 | 第18-19页 |
1.8.7 微生物自身因素 | 第19页 |
1.9 石油烃含量测定方法 | 第19-21页 |
1.9.1 重量法 | 第19页 |
1.9.2 紫外分光光度法 | 第19-21页 |
1.9.3 气相色谱法 | 第21页 |
1.9.4 红外光度法 | 第21页 |
1.10 降解菌群的构建 | 第21-22页 |
第二章 材料与方法 | 第22-30页 |
2.1 材料与方法 | 第22-24页 |
2.1.2 主要试剂与药品表 | 第22-23页 |
2.1.3 主要仪器与设备 | 第23页 |
2.1.4 培养基与溶液 | 第23-24页 |
2.2 方法 | 第24-30页 |
2.2.1 菌种培养及保藏方法 | 第24页 |
2.2.2 菌株筛选 | 第24-25页 |
2.2.3 菌株形态观察 | 第25页 |
2.2.4 驱油活性观察 | 第25页 |
2.2.5 16S rDNA分析鉴定方法 | 第25页 |
2.2.6 DNL-5生长曲线测定方法 | 第25-26页 |
2.2.7 原油最大吸收波长的测定 | 第26页 |
2.2.8 原油标准曲线绘制 | 第26页 |
2.2.9 原油降解率测定方法 | 第26页 |
2.2.10 碳、氮源优化 | 第26-27页 |
2.2.11 培养时间优化 | 第27页 |
2.2.12 NDL-5发酵时间优化 | 第27页 |
2.2.13 接菌量优化 | 第27页 |
2.2.14 菌体培养液表面张力测定 | 第27-28页 |
2.2.15 表面活性剂的提取与制备 | 第28页 |
2.2.16 表面活性剂粗品定性分析 | 第28页 |
2.2.17 三株菌降解原油 | 第28-29页 |
2.2.18 菌株复配方法 | 第29-30页 |
第三章 结果与讨论 | 第30-55页 |
3.1 石油降解菌株的筛选与初步鉴定结果 | 第30-36页 |
3.1.1 形态特征 | 第30-31页 |
3.1.2 菌株降油测试结果 | 第31-33页 |
3.1.3 三株菌的16S rDNA鉴定结果 | 第33-36页 |
3.2 原油最大吸收波长的确定 | 第36-37页 |
3.3 原油标准曲线 | 第37页 |
3.4 DNL-5生长曲线 | 第37-38页 |
3.5 NDL-5培养条件优化 | 第38-42页 |
3.5.1 碳源的选择 | 第38-40页 |
3.5.2 氮源的选择 | 第40-41页 |
3.5.3 培养时间的选择 | 第41-42页 |
3.6 NDL-5降解条件优化 | 第42-44页 |
3.6.1 降解时间 | 第42页 |
3.6.2 接菌量 | 第42-44页 |
3.7 NDL-5菌株乳化效果 | 第44-45页 |
3.8 表面活性剂的提取与鉴定 | 第45-48页 |
3.9 三株菌对原油的降解 | 第48-50页 |
3.9.1 原油组分分析 | 第48页 |
3.9.2 各菌降解后原油组分的变化 | 第48-50页 |
3.10 复配菌株对原油的降解 | 第50-55页 |
结论与展望 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-60页 |
致谢 | 第60页 |