| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第14-25页 |
| 1.1 MRJPs的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.1.1 MRJPs家族成员及结构 | 第14-15页 |
| 1.1.2 MRJPs生理活性 | 第15-17页 |
| 1.1.2.1 抗氧化作用 | 第15页 |
| 1.1.2.2 血压调节作用 | 第15页 |
| 1.1.2.3 免疫调节作用 | 第15-16页 |
| 1.1.2.4 促增殖作用 | 第16页 |
| 1.1.2.5 抗衰老作用 | 第16-17页 |
| 1.1.2.6 蜜蜂级型分化的关键因子 | 第17页 |
| 1.2 HFL-I细胞作为抗衰老及促增殖研究的模型可行性分析 | 第17-18页 |
| 1.3 衰老相关基因及其信号通路 | 第18-23页 |
| 1.3.1 mTOR及mTOR信号通路 | 第18-20页 |
| 1.3.2 SOD1及SOD1相关信号通路 | 第20-21页 |
| 1.3.3 β-catenin及Wnt/β-catenin信号通路 | 第21-23页 |
| 1.3.4 p53及p53信号通路 | 第23页 |
| 1.4 拉曼光谱的基本原理和应用 | 第23-24页 |
| 1.5 研究技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 MRJPs对HFL-I细胞的促增殖作用研究 | 第25-33页 |
| 2.1 材料、试剂和设备 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.3 实验设备 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 2.2.1 MRJPs提取液的制备 | 第26页 |
| 2.2.2 Bradford法测定MRJPs提取液浓度 | 第26页 |
| 2.2.3 MRJPs有效浓度筛选 | 第26-27页 |
| 2.2.4 HFL-I细胞传代间隔时间曲线 | 第27页 |
| 2.2.5 MRJPs对HFL-I细胞的促增殖作用 | 第27页 |
| 2.2.6 数据分析 | 第27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-32页 |
| 2.3.1 MRJPs促细胞增殖有效浓度筛选 | 第27-29页 |
| 2.3.2 细胞传代时间间隔曲线 | 第29-31页 |
| 2.3.3 MRJPs对HFL-I细胞的促增殖作用 | 第31-32页 |
| 2.4 讨论与小结 | 第32-33页 |
| 第三章 MRJPs对HFL-I细胞的抗衰老作用及分子机理研究 | 第33-48页 |
| 3.1 材料、试剂和设备 | 第33-34页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第33页 |
| 3.1.3 实验设备 | 第33-34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-40页 |
| 3.2.1 细胞形态学观察 | 第34页 |
| 3.2.2 MRJPs对细胞寿命影响 | 第34页 |
| 3.2.3 β-半乳糖苷酶活性实验 | 第34页 |
| 3.2.4 MRJPs对HFL-I细胞端粒长度的影响 | 第34-36页 |
| 3.2.5 MRJPs对HFL-I细胞衰老相关基因表达水平的影响 | 第36-40页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-45页 |
| 3.3.1 细胞形态学观察 | 第40-41页 |
| 3.3.2 MRJPs对细胞寿命的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.3 β-半乳糖苷酶活性试验 | 第42-43页 |
| 3.3.4 MRJPs对HFL-I细胞端粒长度的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.5 MRJPs对HFL-I细胞衰老相关基因表达量的影响 | 第44-45页 |
| 3.4 讨论与小结 | 第45-48页 |
| 第四章 基于拉曼光谱法MRJPs对HFL-I细胞的抗衰老作用机理研究 | 第48-52页 |
| 4.1 材料、试剂和设备 | 第48-49页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第48页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第48-49页 |
| 4.1.3 实验设备 | 第49页 |
| 4.2 实验方法 | 第49页 |
| 4.3 结果与分析 | 第49-51页 |
| 4.4 讨论与小结 | 第51-52页 |
| 第五章 结论与展望 | 第52-54页 |
| 5.1 本研究主要成果 | 第52页 |
| 5.2 主要创新点 | 第52页 |
| 5.3 研究展望 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-70页 |
| 附录 | 第70页 |
