| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章：文献综述 | 第12-23页 |
| 1 能源问题日趋严峻 | 第12页 |
| 2 生物柴油 | 第12-14页 |
| 3 育种的方法 | 第14-16页 |
| 3.1 基因工程 | 第14页 |
| 3.2 针对碳水化合物代谢机制的基因修饰 | 第14-15页 |
| 3.3 针对脂肪酸合成的基因工程 | 第15页 |
| 3.4 针对碳同化途径的基因修饰 | 第15-16页 |
| 4 诱变育种 | 第16-18页 |
| 4.1 物理诱变 | 第16-17页 |
| 4.2 化学诱变 | 第17页 |
| 4.3 诱变育种和基因工程的比较 | 第17-18页 |
| 5 诱变机理的解释 | 第18-19页 |
| 6 筛选技术 | 第19-20页 |
| 6.1 筛选技术简介 | 第19页 |
| 6.2 高通量筛选 | 第19-20页 |
| 7 微拟球藻的研究进展 | 第20-23页 |
| 第二章 诱变实验 | 第23-30页 |
| 1 材料仪器 | 第23页 |
| 1.1 藻种培养条件 | 第23页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第23页 |
| 2 藻种分离纯化 | 第23-24页 |
| 3 诱变方法 | 第24-26页 |
| 3.1 预实验确定EMS和NTG的最佳浓度 | 第24页 |
| 3.2 EMS诱变 | 第24-25页 |
| 3.3 NTG诱变 | 第25页 |
| 3.4 诱变藻株的筛选 | 第25-26页 |
| 4 结果与讨论 | 第26-28页 |
| 4.1 确定BODIPY的最佳染色浓度 | 第26-27页 |
| 4.2 EMS和NTG诱变最佳浓度的确定 | 第27-28页 |
| 4.3 EMS和NTG在诱变高油脂藻株的效率比较 | 第28页 |
| 5 小结 | 第28-30页 |
| 第三章 全面评价野生株和诱变株性状 | 第30-42页 |
| 1 材料仪器 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-33页 |
| 2.1 藻种生长情况的检测 | 第30-31页 |
| 2.2 脂肪酸的测量方法 | 第31页 |
| 2.3 测总脂肪方法 | 第31-32页 |
| 2.4 测细胞内总蛋白方法 | 第32页 |
| 2.5 测碳水化合物方法 | 第32-33页 |
| 3 结果与讨论 | 第33-41页 |
| 3.1 野生N.oceanica与诱变株的生长情况对比 | 第33-35页 |
| 3.2 生化组分比较 | 第35-36页 |
| 3.3 蛋白和总碳水化合物的比较 | 第36-38页 |
| 3.4 分析脂肪酸组成结果 | 第38-39页 |
| 3.5 通过脂类组学的方法鉴定野生N.oceanica和LAMB003中甘油三酯的组成 | 第39-41页 |
| 4 小结 | 第41-42页 |
| 第四章 野生株和LAMB003油脂合成路径上关键酶基因转录水平分析 | 第42-55页 |
| 1 前言 | 第42-48页 |
| 1.1 微藻中的油脂代谢途径 | 第44-45页 |
| 1.2 油脂合成路径上的关键基因 | 第45-47页 |
| 1.4 PUFA的合成路径 | 第47-48页 |
| 2 材料方法 | 第48-52页 |
| 2.1 材料仪器 | 第48页 |
| 2.2 提取总RNA方法 | 第48-49页 |
| 2.3 反转录体系和条件 | 第49-50页 |
| 2.4 荧光实时定量PCR体系和程序 | 第50页 |
| 2.5 实时荧光定量PCR内参基因的筛选 | 第50-51页 |
| 2.6 绘制标准曲线 | 第51-52页 |
| 3 结果与讨论 | 第52-54页 |
| 3.1 选取内参基因 | 第52页 |
| 3.2 目的基因转录水平分析 | 第52-54页 |
| 4 小结 | 第54-55页 |
| 工作总结以及未来工作展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-67页 |
| 附录1 | 第67-68页 |
| 附录2 | 第68-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
| 发表文章情况 | 第73页 |
