| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-21页 |
| 1.1 植物生长调节剂的分类及应用 | 第11-13页 |
| 1.1.1 植物生长调节剂的分类 | 第11-12页 |
| 1.1.2 植物生长调节剂的应用 | 第12-13页 |
| 1.2 食品中植物生长调节剂的分析研究进展 | 第13-19页 |
| 1.2.1 样品前处理技术 | 第13-15页 |
| 1.2.1.1 微波辅助萃取(Microwave Assisted Extraction, MAE) | 第14-15页 |
| 1.2.1.2 固相萃取(Solid Phase Extraction, SPE) | 第15页 |
| 1.2.2 植物生长调节剂分析技术 | 第15-19页 |
| 1.2.2.1 气相色谱法(Gas Chromatography, GC) | 第15-16页 |
| 1.2.2.2 高效液相色谱法(High Performance Liquid Chromatography, HPLC) | 第16-17页 |
| 1.2.2.3 免疫分析法(Immunoassay) | 第17-18页 |
| 1.2.2.4 毛细管电泳法(Capillary Electrophoresis, CE) | 第18页 |
| 1.2.2.5 光谱法(Spectroscopy) | 第18-19页 |
| 1.3 液相色谱–质谱分析中的基质效应 | 第19页 |
| 1.4 本论文的研究意义及主要内容 | 第19-21页 |
| 第二章 高效液相色谱–串联质谱法同时测定脐橙中九种植物生长调节剂 | 第21-44页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.1 试剂及样品 | 第22-23页 |
| 2.2.2 仪器及装置 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.3.1 样品的提取 | 第23页 |
| 2.3.2 样品的净化 | 第23-24页 |
| 2.3.3 仪器工作条件 | 第24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-43页 |
| 2.4.1 色谱条件的优化 | 第24页 |
| 2.4.2 质谱条件的优化 | 第24-36页 |
| 2.4.3 提取条件的选择 | 第36-37页 |
| 2.4.4 净化条件的选择 | 第37-39页 |
| 2.4.5 基质标准曲线 | 第39-40页 |
| 2.4.6 检出限、定量限及线性范围 | 第40-41页 |
| 2.4.7 回收率与精密度试验 | 第41-42页 |
| 2.4.8 样品的测定 | 第42-43页 |
| 2.5 结论 | 第43-44页 |
| 第三章 SiO_2@ZIF–8 微球材料的制备及分离富集脐橙中植物生长调节剂 | 第44-53页 |
| 3.1 引言 | 第44-45页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第45页 |
| 3.2.1 试剂及样品 | 第45页 |
| 3.2.2 仪器及装置 | 第45页 |
| 3.3 实验方法 | 第45-47页 |
| 3.3.1 SiO_2@ZIF–8 的制备及表征 | 第45-46页 |
| 3.3.1.1 硅球表面的羧基修饰 | 第45-46页 |
| 3.3.1.2 SiO_2@ZIF–8 核–壳微球制备 | 第46页 |
| 3.3.2 样品中目标物的分离富集 | 第46-47页 |
| 3.3.3 仪器工作条件 | 第47页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第47-52页 |
| 3.4.1 硅球、羧基化的硅球及SiO_2@ZIF–8 的表征 | 第47-49页 |
| 3.4.2 SiO_2@ZIF–8 用于脐橙样品前处理 | 第49-51页 |
| 3.4.2.1 SiO_2@ZIF–8 用于脐橙提取液中色素的吸附 | 第49-50页 |
| 3.4.2.2 SiO_2@ZIF–8 用于富集目标物 | 第50页 |
| 3.4.2.3 解析条件的优化 | 第50-51页 |
| 3.4.3 基质标准曲线 | 第51页 |
| 3.4.4 检出限、定量限及线性范围 | 第51-52页 |
| 3.4.5 样品的测定 | 第52页 |
| 3.5 结论 | 第52-53页 |
| 第四章 多效唑人工抗原的合成与鉴定 | 第53-66页 |
| 4.1 引言 | 第53-54页 |
| 4.2 材料与方法 | 第54页 |
| 4.2.1 试剂 | 第54页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第54页 |
| 4.3 实验方法 | 第54-57页 |
| 4.3.1 多效唑半抗原的制备 | 第54-55页 |
| 4.3.2 多效唑半抗原的纯化及鉴定 | 第55页 |
| 4.3.3 多效唑半抗原的结构鉴定 | 第55-56页 |
| 4.3.4 N–羟基琥珀酰亚胺(NHS)活泼酯法制备人工抗原 | 第56-57页 |
| 4.3.4.1 NHS活泼酯法制备免疫抗原 | 第56页 |
| 4.3.4.2 NHS活泼酯法制备检测抗原 | 第56-57页 |
| 4.3.5 多效唑人工抗原的结构鉴定 | 第57页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第57-65页 |
| 4.4.1 多效唑半抗原的纯化 | 第57-58页 |
| 4.4.2 多效唑半抗原的结构鉴定 | 第58-62页 |
| 4.4.2.1 PAC–HS的质谱鉴定 | 第58-60页 |
| 4.4.2.2 PAC–HS红外光谱鉴定 | 第60-61页 |
| 4.4.2.3 PAC–HS核磁共振分析 | 第61-62页 |
| 4.4.3 多效唑人工抗原的鉴定 | 第62-65页 |
| 4.4.3.1 紫外光谱扫描 | 第62-64页 |
| 4.4.3.2 质谱鉴定及偶联物结合比分析 | 第64-65页 |
| 4.5 结论 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第78页 |
