| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 第1章 引言 | 第15-38页 |
| 1.1 选题目的及意义 | 第15-16页 |
| 1.2 研究现状 | 第16-21页 |
| 1.2.1 手性化合物 | 第16页 |
| 1.2.2 手性污染物在环境行为中的选择性 | 第16-18页 |
| 1.2.3 手性拆分方法 | 第18-21页 |
| 1.2.4 手性识别机理 | 第21页 |
| 1.3 分子印迹技术及其选择性 | 第21-36页 |
| 1.3.1 分子印迹技术 | 第21-22页 |
| 1.3.2 分子印迹基本识别方法 | 第22-23页 |
| 1.3.3 印迹膜与目标分子之间的结合作用 | 第23页 |
| 1.3.4 分子印迹技术的应用 | 第23-24页 |
| 1.3.5 影响分子印迹技术选择性能力的因素 | 第24-25页 |
| 1.3.6 提高分子印迹技术选择性的途径 | 第25-34页 |
| 1.3.7 印迹因子 | 第34-35页 |
| 1.3.8 分子印迹吸附性材料 | 第35-36页 |
| 1.3.9 分子印迹识别能力展望 | 第36页 |
| 1.4 主要研究内容 | 第36-37页 |
| 1.5 论文创新点 | 第37-38页 |
| 第2章 空间定向引导的高选择性手性分子印迹技术 | 第38-55页 |
| 2.1 实验部分 | 第39-41页 |
| 2.1.1 试剂与仪器 | 第39-40页 |
| 2.1.2 MIPs和nMIPs传感器的制备 | 第40页 |
| 2.1.3 电化学测量方法 | 第40页 |
| 2.1.4 样品处理 | 第40-41页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第41-54页 |
| 2.2.1 聚合物底液成分配比的影响 | 第41页 |
| 2.2.2 电聚合丙烯酰胺 | 第41-42页 |
| 2.2.3 β-CD及mono2HP6HS-β-CD的红外光谱图 | 第42页 |
| 2.2.4 MIPs及nMIPs的H核磁共振响应(1H-NMR) | 第42-44页 |
| 2.2.5 印迹膜的伏安响应 | 第44-46页 |
| 2.2.6 实验条件优化 | 第46-47页 |
| 2.2.7 识别不同浓度的LEVC的DPV响应 | 第47-48页 |
| 2.2.8 分子印迹传感器的选择性研究 | 第48-51页 |
| 2.2.9 抗环境污染物干扰 | 第51-52页 |
| 2.2.10 识别机理 | 第52-53页 |
| 2.2.11 重现性及稳定性 | 第53页 |
| 2.2.12 环境水样及人体血清样品测定 | 第53-54页 |
| 2.3 本章小结 | 第54-55页 |
| 第3章 金属配合物衍生化多作用位点的手性分子印迹技术 | 第55-68页 |
| 3.1 实验部分 | 第56-58页 |
| 3.1.1 试剂与仪器 | 第56页 |
| 3.1.2 咪唑铜的合成 | 第56-57页 |
| 3.1.3 MIPs传感器及nMIPs传感器的制备 | 第57-58页 |
| 3.1.4 电化学检测方法 | 第58页 |
| 3.1.5 样品处理 | 第58页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第58-67页 |
| 3.2.1 聚合物底液成分配比的影响 | 第58页 |
| 3.2.2 电聚合邻苯二胺 | 第58-59页 |
| 3.2.3 不同条件下的修饰电极伏安响应 | 第59-60页 |
| 3.2.4 手性分子印迹膜在不同条件下的阻抗响应 | 第60-61页 |
| 3.2.5 实验条件优化 | 第61-62页 |
| 3.2.6 Cu离子用量的研究 | 第62页 |
| 3.2.7 传感器对不同浓度LMS的响应 | 第62-63页 |
| 3.2.8 选择性研究 | 第63-65页 |
| 3.2.9 抗环境污染物干扰 | 第65页 |
| 3.2.10 识别机理 | 第65-66页 |
| 3.2.11 重现性及稳定性 | 第66页 |
| 3.2.12 环境水样及食物样品测定 | 第66-67页 |
| 3.3 本章小结 | 第67-68页 |
| 第4章 环糊精定位高精度识别的手性分子印迹技术 | 第68-81页 |
| 4.1 实验部分 | 第69-70页 |
| 4.1.1 试剂与仪器 | 第69页 |
| 4.1.2 咪唑铜配合物的合成 | 第69页 |
| 4.1.3 MIPs传感器及nMIPs传感器的制备 | 第69-70页 |
| 4.1.4 电化学测量 | 第70页 |
| 4.1.5 血样处理 | 第70页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第70-80页 |
| 4.2.1 环糊精自组装时间及主-客体包合反应时间的影响 | 第70-71页 |
| 4.2.2 电聚合过程 | 第71-72页 |
| 4.2.3 手性分子印迹膜的伏安响应及阻抗响应 | 第72-74页 |
| 4.2.4 实验条件优化 | 第74-75页 |
| 4.2.5 铜离子用量 | 第75页 |
| 4.2.6 手性分子印迹传感器对不同浓度LMS的响应 | 第75-76页 |
| 4.2.7 传感器的手性分离效果研究 | 第76-78页 |
| 4.2.8 抗环境污染物干扰 | 第78页 |
| 4.2.9 识别机理 | 第78-79页 |
| 4.2.10 传感器的重现性及稳定性 | 第79页 |
| 4.2.11 环境水样及人体血液样品测定 | 第79-80页 |
| 4.3 本章小结 | 第80-81页 |
| 第5章 DNA引导空间构象的手性分子印迹技术 | 第81-100页 |
| 5.1 实验部分 | 第82-84页 |
| 5.1.1 试剂与仪器 | 第82页 |
| 5.1.2 MIPs/DNA传感器、nMIPs/DNA传感器及MIPs传感器的制备 | 第82-83页 |
| 5.1.3 电化学测量方法 | 第83页 |
| 5.1.4 样品处理 | 第83-84页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第84-98页 |
| 5.2.1 自组装时间及杂交时间的影响 | 第84页 |
| 5.2.2 D-Carnitine嵌入DNA时间的影响 | 第84-85页 |
| 5.2.3 D-Carnitine与DNA作用形式研究 | 第85-88页 |
| 5.2.4 聚合条件的选择 | 第88-89页 |
| 5.2.5 手性分子印迹膜的伏安响应(DPV)及交流阻抗(EIS)响应 | 第89-91页 |
| 5.2.6 实验条件优化 | 第91-93页 |
| 5.2.7 传感器对D-Carnitine的响应趋势 | 第93-94页 |
| 5.2.8 手性分子印迹传感器的选择性研究 | 第94-96页 |
| 5.2.9 抗环境污染物干扰 | 第96页 |
| 5.2.10 识别机理 | 第96-97页 |
| 5.2.11 重现性、稳定性及使用寿命 | 第97页 |
| 5.2.12 环境污水及食物样品测定 | 第97-98页 |
| 5.3 本章小结 | 第98-100页 |
| 结论与研究展望 | 第100-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-120页 |
| 攻读学位期间取得学术成果 | 第120-121页 |
