摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
1. 文献综述 | 第14-27页 |
1.1 概述 | 第14-15页 |
1.2 应用候选基因法寻找分子遗传标记 | 第15-16页 |
1.2.1 候选基因法 | 第15页 |
1.2.2 候选基因的选择 | 第15-16页 |
1.3 阿黑皮素原(Pro-opiomelanocortin,POMC) | 第16-20页 |
1.3.1 POMC调节食欲的作用机制 | 第16-18页 |
1.3.2 POMC基因的定位、结构及蛋白质翻译加工过程 | 第18-19页 |
1.3.3 POMC基因多态性研究进展 | 第19-20页 |
1.4 解偶联蛋白(uncoupling proteins,UCPs) | 第20-24页 |
1.4.1 UCP2蛋白及其介导质子漏的机制 | 第22-23页 |
1.4.2 UCP2基因的结构及分布 | 第23-24页 |
1.4.3 UCP2基因多态性研究进展 | 第24页 |
1.5 质谱(mass spectrometry,MS)技术在基因分型中的应用 | 第24-25页 |
1.6 研究目的及试验方案 | 第25-27页 |
1.6.1 研究目的 | 第25-26页 |
1.6.2 试验方案 | 第26-27页 |
2. 试验材料和方法 | 第27-42页 |
2.1 试验材料 | 第27-28页 |
2.1.1 试验动物 | 第27-28页 |
2.1.2 样品采集 | 第28页 |
2.2 主要仪器设备和试剂 | 第28-30页 |
2.2.1 主要仪器设备 | 第28-29页 |
2.2.2 主要试剂及试剂盒 | 第29页 |
2.2.3 主要试剂的配制 | 第29-30页 |
2.3 试验方法 | 第30-41页 |
2.3.1 生产性能测定 | 第30-32页 |
2.3.2 基因组DNA的提取及检测 | 第32-33页 |
2.3.3 引物的设计与合成 | 第33-34页 |
2.3.4 DNA水平上SNPs位点的检测 | 第34-35页 |
2.3.5 对候选SNPs位点进行基因分型 | 第35-38页 |
2.3.6 组织总RNA的提取 | 第38-39页 |
2.3.7 cDNA的合成 | 第39-40页 |
2.3.8 mRNA相对表达量研究 | 第40-41页 |
2.4 数据分析 | 第41-42页 |
2.4.1 主要分子生物学软件 | 第41页 |
2.4.2 数据处理 | 第41-42页 |
3. 结果与分析 | 第42-57页 |
3.1 基因组DNA与肝脏组织总RNA抽提结果 | 第42-43页 |
3.2 POMC基因对家兔生产性状的遗传效应分析 | 第43-47页 |
3.2.1 POMC基因变异位点的检测 | 第43-44页 |
3.2.2 POMC基因变异位点的遗传多态性 | 第44页 |
3.2.3 POMC基因多态性对家兔生产性状的遗传效应 | 第44-47页 |
3.3 UCP2基因对家兔生产性状的遗传效应分析 | 第47-53页 |
3.3.1 UCP2基因变异位点的检测结果 | 第47-48页 |
3.3.2 候选SNP位点的分析筛选 | 第48-50页 |
3.3.3 UCP2基因c.72 G>A位点遗传多态性 | 第50页 |
3.3.4 UCP2基因多态性对生产性状的遗传效应 | 第50-53页 |
3.4 UCP2基因mRNA相对表达量分析 | 第53-57页 |
3.4.1 标准曲线的绘制 | 第53-54页 |
3.4.2 UCP2基因在不同生长阶段的mRNA表达差异 | 第54-55页 |
3.4.3 UCP2基因不同基因型的mRNA相对表达量分析 | 第55-57页 |
4. 讨论 | 第57-65页 |
4.1 POMC和UCP2基因在家兔中的遗传多态性分析 | 第57-59页 |
4.1.1 POMC基因遗传多态性分析 | 第57-58页 |
4.1.2 UCP2基因遗传多态性分析 | 第58-59页 |
4.2 POMC基因多态性对家兔生产性状的遗传效应分析 | 第59-60页 |
4.3 UCP2基因多态性对家兔生产性状的遗传效应分析 | 第60-63页 |
4.4 UCP2基因mRNA相对表达量分析 | 第63-65页 |
4.4.1 不同生长阶段UCP2基因mRNA相对表达量分析 | 第63页 |
4.4.2 c.72 G>A位点对UCP2基因mRNA表达量的影响 | 第63-65页 |
5. 结论 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第74页 |