摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
部分缩写的中英文对照 | 第10-11页 |
引言 | 第11-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-25页 |
1.1 布鲁氏菌病 | 第13-15页 |
1.1.1 布鲁氏菌的发现历程 | 第13-14页 |
1.1.2 布鲁氏菌的种类 | 第14页 |
1.1.3 布鲁氏菌的理化特性与感染机制 | 第14-15页 |
1.2 单核苷酸多态性(SNP) | 第15-17页 |
1.2.1 SNP的概述 | 第15页 |
1.2.2 SNP的特征 | 第15页 |
1.2.3 SNP的检测方法 | 第15-16页 |
1.2.4 限制性片段长度多态性分析(RFLP) | 第16页 |
1.2.5 等位基因特异性PCR(AS-PCR) | 第16页 |
1.2.6 变性高效液相色谱法(dHPLC) | 第16页 |
1.2.7 单链构象多态性分析(SSCP) | 第16-17页 |
1.2.8 SNP的应用概况 | 第17页 |
1.3 单倍型(Haplotype) | 第17-19页 |
1.3.1 单倍型的介绍 | 第17-18页 |
1.3.2 单倍型的关联分析 | 第18-19页 |
1.3.3 单倍型在研究疾病相关性中的应用 | 第19页 |
1.4 Toll样受体的概述 | 第19-22页 |
1.4.1 TLR的组成结构 | 第20页 |
1.4.2 TLR的分布 | 第20页 |
1.4.3 TLR识别的配体 | 第20-21页 |
1.4.4 TLR的信号通路 | 第21页 |
1.4.5 TLR的生物功能 | 第21-22页 |
1.5 绵羊Toll样受体家族 | 第22页 |
1.6 Toll受体基因的多态性疾病研究概况 | 第22-23页 |
1.7 本研究目的及意义 | 第23-24页 |
1.8 技术路线 | 第24-25页 |
第二章 中国美利奴羊TLR4、TLR2基因多态性的检测及其与布鲁氏菌病易感性相关性的分析 | 第25-46页 |
2.1 材料和方法 | 第25-36页 |
2.1.1 实验材料 | 第25-26页 |
2.1.2 常规溶液及培养基的配置 | 第26-28页 |
2.1.3 主要的分子生物学软件 | 第28页 |
2.1.4 实验方法 | 第28-35页 |
2.1.5 氯化钙法-制备大肠杆菌的感受态细胞 | 第35-36页 |
2.2 结果分析与讨论 | 第36-44页 |
2.2.1 布鲁氏菌阳性检测 | 第36-37页 |
2.2.2 基因组DNA电泳图检测结果 | 第37页 |
2.2.3 绵羊TLR4和TLR2基因的PCR扩增 | 第37-38页 |
2.2.4 TLR4、TLR2基因的SSCP结果分析 | 第38-40页 |
2.2.5 中国美利奴羊TLR4和TLR2基因的遗传多态性位点的分析 | 第40-42页 |
2.2.6 绵羊TLR4第三外显子的TLR4(1093-1370)与TLR4(1382-1634)序列的测序结果 | 第42页 |
2.2.7 不同品种绵羊之间TLR4基因exon3的生物信息学分析 | 第42-43页 |
2.2.8 中国美利奴羊TLR4、TLR2基因的多态位点与布鲁氏菌病相关性分析 | 第43-44页 |
2.3 结论 | 第44-46页 |
第三章 中国美利奴羊TLR4基因单倍型的构建及其与布鲁氏菌病易感性关联分析 | 第46-53页 |
3.1 材料和方法 | 第46-47页 |
3.1.1 实验材料 | 第46页 |
3.1.2 常规溶液和培养基的配制 | 第46页 |
3.1.3 主要分子生物学软件 | 第46页 |
3.1.4 实验方法 | 第46-47页 |
3.2 结果和讨论 | 第47-51页 |
3.2.1 鉴定中国美利奴羊TLR4基因的PCR扩增结果 | 第47-48页 |
3.2.2 中国美利奴羊TLR4基因的SNPs的检测 | 第48-49页 |
3.2.3 Hardy-Weinberg平衡的检测 | 第49页 |
3.2.4 中国美利奴羊TLR4基因的连锁不平衡分析 | 第49-50页 |
3.2.5 中国美利奴羊TLR4基因的单倍型和布鲁氏菌病的关联性分析 | 第50-51页 |
3.3 结论 | 第51-53页 |
第四章 总结与展望 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
作者简介 | 第61-62页 |
在学期间主要参与的研究项目 | 第61页 |
在学期间发表文章 | 第61页 |
获奖情况 | 第61-62页 |
附件 | 第62页 |