| 致谢 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-10页 |
| Abstract | 第10-15页 |
| 缩略词 | 第15-17页 |
| 目次 | 第17-20页 |
| 绪论 | 第20-23页 |
| 1 第一章 眼眶来源脂肪干细胞的分离和鉴定 | 第23-47页 |
| ·引言 | 第23-25页 |
| ·实验试剂与仪器 | 第25-28页 |
| ·材料与试剂 | 第25页 |
| ·实验仪器及材料 | 第25-26页 |
| ·相关溶液的配置 | 第26-28页 |
| ·实验方法 | 第28-37页 |
| ·hEASCs分离培养 | 第28-30页 |
| ·单克隆形成能力检测 | 第30页 |
| ·流式分选鉴定 | 第30-31页 |
| ·三系分化能力检测 | 第31-33页 |
| ·基因表达检测 | 第33-35页 |
| ·神经特性免疫细胞荧光检测 | 第35-36页 |
| ·胞增殖检测 | 第36页 |
| ·hEASCs神经诱导与检测 | 第36页 |
| ·ATP刺激下hEASCs迁移检测 | 第36-37页 |
| ·实验结果 | 第37-45页 |
| ·hEASCs分离和培养 | 第37-38页 |
| ·hEASCs流式鉴定 | 第38页 |
| ·hEASCs三系分化能力 | 第38-39页 |
| ·hEASCs干细胞基因表达 | 第39-40页 |
| ·hEASCs细胞增殖能力 | 第40页 |
| ·hEASCs的神经特性 | 第40-42页 |
| ·hEASCs神经分化能力 | 第42-44页 |
| ·ATP刺激hEASCs迁移 | 第44-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| 2 第二章 HEASCS复合17-B-雌二醇促进大鼠脊髓损伤修复 | 第47-78页 |
| ·引言 | 第47-48页 |
| ·实验试剂与仪器 | 第48-51页 |
| ·材料和试剂 | 第48-49页 |
| ·实验仪器及材料 | 第49页 |
| ·实验动物 | 第49-50页 |
| ·相关溶液的配置 | 第50-51页 |
| ·实验方法 | 第51-60页 |
| ·实验动物分组 | 第51页 |
| ·大鼠脊髓损伤模型的建立 | 第51-52页 |
| ·hEASCs细胞移植 | 第52页 |
| ·基因检测 | 第52-55页 |
| ·组织学检测 | 第55-57页 |
| ·免疫荧光 | 第57页 |
| ·TUNEL染色 | 第57-58页 |
| ·荧光金FG逆行追踪 | 第58页 |
| ·行为学评价 | 第58-60页 |
| ·统计学分析 | 第60页 |
| ·实验结果 | 第60-76页 |
| ·建模和移植细胞 | 第60页 |
| ·体内试验流程图 | 第60-61页 |
| ·术后大体观察及荧光追踪 | 第61-63页 |
| ·免疫荧光检测 | 第63-67页 |
| ·组织学评估 | 第67-70页 |
| ·行为学评估 | 第70-71页 |
| ·荧光金(FG)逆行追踪 | 第71-72页 |
| ·TUNEL染色 | 第72-73页 |
| ·基因表达检测 | 第73-76页 |
| ·讨论 | 第76-78页 |
| 总结 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 综述 | 第88-105页 |
| 参考文献 | 第95-105页 |
| 作者简历及在读期间所取得的科研成果 | 第105-106页 |