| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 前言 | 第9-14页 |
| 1.1 昆虫GPCRs的研究现状 | 第9-11页 |
| 1.2 Methuselah的研究现状 | 第11-12页 |
| 1.3 模式生物-赤拟谷盗 | 第12-13页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第13-14页 |
| 第2章 昆虫family-B GPCRs的比较基因组学分析 | 第14-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第14页 |
| 2.2 实验方法 | 第14-15页 |
| 2.2.1 昆虫family-B GPCRs的鉴定 | 第14页 |
| 2.2.2 候选基因的结构分析 | 第14页 |
| 2.2.3 昆虫family-B GPCRs的进化分析 | 第14-15页 |
| 2.3 结果与分析 | 第15-35页 |
| 2.3.1 昆虫family-B GPCRs的鉴定 | 第15-31页 |
| 2.3.2 昆虫family-B GPCRs的进化模式 | 第31-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-39页 |
| 2.4.1 PTHRL在哺乳动物和昆虫之间的分化 | 第35-37页 |
| 2.4.2 HE6 receptor-like基因在赤拟谷盗中的特异性扩增 | 第37-38页 |
| 2.4.3 昆虫mthl的分化 | 第38-39页 |
| 第3章 Tcmthl1基因的功能分析 | 第39-58页 |
| 3.1 实验材料、仪器与试剂 | 第39页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第39页 |
| 3.1.3 实验药品与试剂 | 第39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-49页 |
| 3.2.1 总RNA提取 | 第39-40页 |
| 3.2.2 逆转录合成cDNA | 第40页 |
| 3.2.3 Tcmthl1全长cDNA克隆和测序 | 第40-43页 |
| 3.2.4 Tcmthl1表达模式分析 | 第43-44页 |
| 3.2.5 Tcmthl1的双链RNA的合成 | 第44-46页 |
| 3.2.6 Tcmthl1的dsRNA的注射 | 第46-47页 |
| 3.2.7 赤拟谷盗产卵量和卵成活率统计 | 第47页 |
| 3.2.8 饥饿和高温处理 | 第47-48页 |
| 3.2.9 信号通路分析 | 第48-49页 |
| 3.2.10 数据处理 | 第49页 |
| 3.3 结果与分析 | 第49-53页 |
| 3.3.1 Tcmthl1基因的结构 | 第49页 |
| 3.3.2 Tcmthl1在赤拟谷盗不同生长发育时期的表达 | 第49页 |
| 3.3.3 Tcmthl1影响赤拟谷盗幼虫、蛹的发育和成虫羽化 | 第49-51页 |
| 3.3.4 Tcmthl1被抑制表达后降低了赤拟谷盗产卵量和卵的成活率 | 第51-52页 |
| 3.3.5 Tcmthl1基因维持赤拟谷盗对饥饿和高温的强抵抗能力 | 第52页 |
| 3.3.6 Tcmthl1信号通路初步研究 | 第52-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-58页 |
| 3.4.1 Tcmthl1影响赤拟谷盗幼虫、蛹的发育和成虫的变态行为 | 第54页 |
| 3.4.2 Tcmthl1对赤拟谷盗生殖的影响主要是由雌性个体介导的 | 第54-55页 |
| 3.4.3 Tcmthl1对饥饿和高温的调节与赤拟谷盗的适应性相关 | 第55-56页 |
| 3.4.4 昆虫mth1和mth的功能分化 | 第56页 |
| 3.4.5 Tcmthl1的信号通路 | 第56-58页 |
| 第4章 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 在读期间已/待发表的学术论文及研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
