| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第1章 绪论 | 第15-17页 |
| 第2章 H_2S对HepG2细胞中apo(a)表达的影响 | 第17-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.1 主要试剂和抗体 | 第17页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-22页 |
| 2.2.1 白种人肝癌细胞（Hep G2细胞）培养 | 第18页 |
| 2.2.2 实验分组情况 | 第18-19页 |
| 2.2.3 MTT细胞增殖及细胞毒性检测试验 | 第19页 |
| 2.2.4 Western blot相关液体配置 | 第19页 |
| 2.2.5 细胞蛋白提取及定量 | 第19-20页 |
| 2.2.6 Western blot分析 | 第20-21页 |
| 2.2.7 Reverse Transcription -PCR检测 | 第21-22页 |
| 2.2.8 ELISA | 第22页 |
| 2.2.9 统计学分析结果 | 第22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22-25页 |
| 2.3.1 不同浓度H_2S对HepG2细胞的影响 | 第22-23页 |
| 2.3.2 不同浓度的NaHS对HepG2细胞中apo(a)的表达及分泌的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.3 apo(a)表达及分泌水平在NaHS处理不同时间后的变化情况 | 第24-25页 |
| 2.4 小结 | 第25-27页 |
| 第3章 H_2S下调apo(a)表达的机制 | 第27-45页 |
| 3.1 实验所需材料 | 第27-28页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第27页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第27-28页 |
| 3.2 方法 | 第28-32页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第28页 |
| 3.2.2 实验分组情况 | 第28-29页 |
| 3.2.3 siRNA的转染 | 第29-30页 |
| 3.2.4 Reverse Transcription -PCR | 第30页 |
| 3.2.5 蛋白的提取与定量 | 第30-31页 |
| 3.2.6 Western blot | 第31页 |
| 3.2.7 ELISA详见第一部分实验方法中的 2.2.8 | 第31页 |
| 3.2.8 细胞免疫荧光 | 第31-32页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第32页 |
| 3.3 实验结果 | 第32-43页 |
| 3.3.1 干扰FXR及抑制PKCα 激活对H_2S下调HepG2细胞中apo(a)表达的影响 | 第32-38页 |
| 3.3.2 HNF4α 沉默或抑制AKT激活对H_2S下调HepG2细胞中apo(a) 表达的影响 | 第38-43页 |
| 3.4 小结 | 第43-45页 |
| 第4章 讨论 | 第45-51页 |
| 第5章 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 文献综述 | 第57-71页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 攻读学位期间所获科研成果 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 基金资助 | 第75页 |
