| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 1 材料与仪器 | 第12-14页 |
| 2 实验方法 | 第14-23页 |
| 2.1 LMC及其衍生物纳米粒的制备 | 第14-17页 |
| 2.1.1 LMC纳米粒的制备 | 第14-15页 |
| 2.1.2 叶酸修饰LMC纳米粒的制备 | 第15页 |
| 2.1.3 生物素修饰LMC纳米粒的制备 | 第15页 |
| 2.1.4 叶酸和生物素双修饰LMC纳米粒的制备 | 第15页 |
| 2.1.5 PEG醛的制备 | 第15-16页 |
| 2.1.6 PEG醛的活化率 | 第16页 |
| 2.1.7 PEG修饰FA-LMC纳米粒的制备 | 第16页 |
| 2.1.8 罗丹明B标记纳米粒的制备 | 第16-17页 |
| 2.2 LMC及其衍生物的表征 | 第17页 |
| 2.2.1 红外光谱(FTIR) | 第17页 |
| 2.2.2 核磁共振(~1H NMR) | 第17页 |
| 2.2.3 示差扫描量热(DSC) | 第17页 |
| 2.2.4 接触角 | 第17页 |
| 2.2.5 粒径和表面电荷 | 第17页 |
| 2.3 蛋白吸附 | 第17页 |
| 2.4 载PTX纳米粒的载药量、包封率及体外释放 | 第17-19页 |
| 2.4.1 色谱分析条件 | 第17-18页 |
| 2.4.2 标准曲线 | 第18页 |
| 2.4.3 载PTX纳米粒的制备 | 第18页 |
| 2.4.4 载药量和包封率测定 | 第18页 |
| 2.4.5 载PTX纳米粒的体外释药 | 第18-19页 |
| 2.5 细胞试验 | 第19-20页 |
| 2.5.1 肿瘤细胞对纳米粒的摄取 | 第19页 |
| 2.5.2 游离配体对肿瘤细胞摄取的影响 | 第19页 |
| 2.5.3 正常细胞对纳米粒的摄取 | 第19页 |
| 2.5.4 巨噬细胞对纳米粒的摄取 | 第19页 |
| 2.5.5 MTT试验 | 第19-20页 |
| 2.6 载PTX纳米粒对H22荷瘤小鼠抑瘤效果及组织分布 | 第20-22页 |
| 2.6.1 H22荷瘤小鼠模型的建立 | 第20页 |
| 2.6.2 抑瘤试验 | 第20页 |
| 2.6.3 组织样品处理 | 第20-21页 |
| 2.6.4 色谱分析条件 | 第21页 |
| 2.6.5 方法专属性 | 第21页 |
| 2.6.6 标准曲线与检测限 | 第21页 |
| 2.6.7 精密度与回收率 | 第21-22页 |
| 2.6.8 载PTX纳米粒在荷瘤小鼠体内的组织分布 | 第22页 |
| 2.7 统计学分析 | 第22-23页 |
| 3 结果与讨论 | 第23-52页 |
| 3.1 LMC及其衍生物的表征 | 第23-30页 |
| 3.1.1 红外光谱(FTIR) | 第23-25页 |
| 3.1.2 核磁共振(~1H NMR) | 第25-27页 |
| 3.1.3 DSC | 第27-28页 |
| 3.1.4 粒径 | 第28-29页 |
| 3.1.5 表面电荷 | 第29-30页 |
| 3.1.6 接触角 | 第30页 |
| 3.2 蛋白吸附 | 第30-31页 |
| 3.3 载PTX纳米粒的载药量、包封率及体外释放 | 第31-34页 |
| 3.3.1 标准曲线 | 第31页 |
| 3.3.2 载药量和包封率 | 第31-33页 |
| 3.3.3 载PTX纳米粒的体外释放 | 第33-34页 |
| 3.4 细胞试验 | 第34-37页 |
| 3.4.1 肿瘤细胞摄取 | 第34-35页 |
| 3.4.2 正常细胞摄取 | 第35页 |
| 3.4.3 巨噬细胞摄取 | 第35-36页 |
| 3.4.4 MTT试验 | 第36-37页 |
| 3.5 抑瘤试验 | 第37-41页 |
| 3.5.1 肿瘤生长曲线 | 第37-38页 |
| 3.5.2 抑瘤率 | 第38-41页 |
| 3.6 组织分布试验 | 第41-52页 |
| 3.6.1 组织样品处理 | 第41页 |
| 3.6.2 方法专属性 | 第41-44页 |
| 3.6.3 标准曲线 | 第44页 |
| 3.6.4 回收率与精密度 | 第44-46页 |
| 3.6.5 荷瘤小鼠体内组织分布 | 第46-52页 |
| 总结和展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 个人简历 | 第58-59页 |
| 文献综述 纳米载体的表面修饰及其在肿瘤靶向中的应用 | 第59-70页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
