摘要 | 第4-9页 |
Abstract | 第9-14页 |
缩略词简表 | 第16-20页 |
前言 | 第20-22页 |
第一章 SNL神经病理性疼痛模型的建立,检测疼痛状态下miR-30b和Nav1.3 的表达变化 | 第22-49页 |
引言 | 第22-23页 |
1.1 材料 | 第23-27页 |
1.1.1 实验动物 | 第23页 |
1.1.2 实验分组 | 第23页 |
1.1.3 实验材料 | 第23-26页 |
1.1.4 耗材 | 第26-27页 |
1.2 方法 | 第27-38页 |
1.2.1 SNL模型的建立 | 第27-28页 |
1.2.2 行为学测定 | 第28-29页 |
1.2.3 qRT-PCR技术 | 第29-32页 |
1.2.4 western-blot技术 | 第32-34页 |
1.2.5 免疫荧光技术 | 第34-36页 |
1.2.6 原位杂交技术 | 第36-38页 |
1.3 数据分析 | 第38页 |
1.4 结果 | 第38-46页 |
1.4.1 miR-30b-5p与SCN3A 3'UTR紧密相关 | 第38-39页 |
1.4.2 SNL神经损伤对大鼠行为学的影响 | 第39-41页 |
1.4.3 SNL神经病理性疼痛中Nav1.3 和miR-30b的表达变化 | 第41-42页 |
1.4.4 Nav1.3 在DRG神经元和脊髓的表达分布 | 第42-44页 |
1.4.5 miR-30b在DRG神经元和脊髓的表达分布 | 第44-46页 |
1.5 讨论 | 第46-48页 |
1.6 结论 | 第48-49页 |
第二章 miR-30b通过结合SCN3A 3'UTR调控Nav1.3 | 第49-62页 |
引言 | 第49-50页 |
2.1 材料 | 第50-51页 |
2.1.1 细胞 | 第50页 |
2.1.2 仪器 | 第50页 |
2.1.3 耗材 | 第50-51页 |
2.2 方法 | 第51-57页 |
2.2.1 PC12细胞培养及转染 | 第51-53页 |
2.2.2 双荧光素酶报告基因检测 | 第53-54页 |
2.2.3 原代DRG细胞培养及转染 | 第54-56页 |
2.2.4 qRT-PCR技术 | 第56-57页 |
2.2.5 western-blot技术 | 第57页 |
2.3 数据分析 | 第57页 |
2.4 结果 | 第57-60页 |
2.4.1 miR-30b靶向调控SCN3A | 第57-58页 |
2.4.2 miR-30b agomir对Nav1.3 表达的影响 | 第58-59页 |
2.4.3 miR-30b antagomir对Nav1.3 表达的影响 | 第59-60页 |
2.5 讨论 | 第60-61页 |
2.6 结论 | 第61-62页 |
第三章 鞘内注射miR-30b缓解SNL诱发的神经病理性疼痛 | 第62-73页 |
引言 | 第62-63页 |
3.1 材料 | 第63页 |
3.1.1 实验动物 | 第63页 |
3.1.2 实验分组 | 第63页 |
3.1.3 主要仪器(见第一章 | 第63页 |
3.1.4 主要试剂(见第一章) | 第63页 |
3.1.5 试剂配置(见第一章) | 第63页 |
3.2 方法 | 第63-64页 |
3.2.1 SNL模型制作(见第一章) | 第63页 |
3.2.2 蛛网膜下腔置管 | 第63-64页 |
3.2.3 行为学测定(见第一章) | 第64页 |
3.2.4 qRT-PCR技术(见第一章) | 第64页 |
3.2.5 western-blot技术(见第一章) | 第64页 |
3.3 数据分析 | 第64-65页 |
3.4 结果 | 第65-70页 |
3.4.1 鞘内注射miR-30b agomir对SNL大鼠行为学的影响 | 第65-66页 |
3.4.2 鞘内注射miR-30b agomir,Nav1.3 和miR-30b的表达情况 | 第66-68页 |
3.4.3 鞘内注射miR-30b antagomir对正常大鼠行为的影响 | 第68-69页 |
3.4.4 正常大鼠鞘内注射miR-30b antagomir,Nav1.3 和miR-30b的表达情况 | 第69-70页 |
3.5 讨论 | 第70-72页 |
3.6 结论 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-79页 |
综述 | 第79-90页 |
参考文献 | 第86-90页 |
个人简历 | 第90-91页 |
致谢 | 第91页 |