| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第14-31页 |
| 1.1 低聚糖复合物 | 第14-17页 |
| 1.1.1 低聚糖复合物的简介 | 第14-15页 |
| 1.1.2 低聚糖复合物的生理特性 | 第15-16页 |
| 1.1.3 低聚糖复合物的功能 | 第16-17页 |
| 1.2 年龄相关性黄斑变性（AMD） | 第17-22页 |
| 1.2.1 年龄相关性黄斑变性与视网膜色素上皮细胞的简介 | 第17页 |
| 1.2.2 年龄相关性黄斑变性的分类 | 第17-18页 |
| 1.2.3 AMD的发病因素 | 第18-22页 |
| 1.3 脱乙酰基蛋白酶（SIRT1）研究进展 | 第22-28页 |
| 1.3.1 Sirtuins简介 | 第22-23页 |
| 1.3.2 SIRT1分子结构 | 第23-24页 |
| 1.3.3 SIRT1在眼中的分布 | 第24-25页 |
| 1.3.4 SIRT1/PGC-1α通路 | 第25-26页 |
| 1.3.5 SIRT1的激活与氧化应激 | 第26-28页 |
| 1.4 AMD的天然药物治疗方法 | 第28-30页 |
| 1.5 本论文研究的目的及意义 | 第30-31页 |
| 第二章 OSC的制备及主要成分探究 | 第31-40页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验仪器与材料 | 第31-32页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第31页 |
| 2.2.2 实验药品和试剂 | 第31-32页 |
| 2.3 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.3.1 OSC的制备 | 第32页 |
| 2.3.2 OSC的纯化分析 | 第32页 |
| 2.3.3 OSC元素分析 | 第32页 |
| 2.3.4 高效液相色谱检测分子量 | 第32-33页 |
| 2.3.5 糖含量测定及平均聚合度计算 | 第33页 |
| 2.3.6 多酚含量测定 | 第33-34页 |
| 2.3.7 FT-IR红外光谱测定 | 第34页 |
| 2.3.8 低聚糖阿魏酸酯定性实验 | 第34页 |
| 2.3.9 双波长分光光度法检测阿魏酸及低聚糖阿魏酸酯含量 | 第34页 |
| 2.3.10 DPPH清除自由基实验 | 第34页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第34-39页 |
| 2.4.1 OSC主要组成成分测定 | 第34-35页 |
| 2.4.2 OSC的分子量测定 | 第35-36页 |
| 2.4.3 OSC的红外光谱分析 | 第36-37页 |
| 2.4.4 OSC的纯化分析 | 第37-38页 |
| 2.4.5 DPPH自由基清除能力的研究 | 第38-39页 |
| 2.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 OSC对ARPE-19 细胞的氧化损伤的影响 | 第40-49页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 实验仪器与材料 | 第40-42页 |
| 3.2.1 实验细胞 | 第40页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.2.3 实验药品和试剂 | 第41页 |
| 3.2.4 试剂的配制 | 第41-42页 |
| 3.3 实验方法 | 第42-44页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第42页 |
| 3.3.2 MTT法检测细胞活力 | 第42-44页 |
| 3.3.3 Hoechest33258染色 | 第44页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第44-48页 |
| 3.4.1 OSC对ARPE-19 细胞活力的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.2 H_2O_2对ARPE-19 细胞活力的影响 | 第45页 |
| 3.4.3 OSC对H_2O_2诱导的ARPE-19 细胞损伤后的修复作用 | 第45-46页 |
| 3.4.4 OSC对H_2O_2诱导的ARPE-19 细胞损伤下的保护作用 | 第46-47页 |
| 3.4.5 ARPE-19 细胞凋亡形态学观察 | 第47-48页 |
| 3.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 OSC对ARPE-19 细胞氧化应激的影响 | 第49-55页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 实验仪器与材料 | 第49页 |
| 4.2.1 实验细胞 | 第49页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第49页 |
| 4.2.3 实验药品和试剂 | 第49页 |
| 4.2.4 试剂的配制 | 第49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-51页 |
| 4.3.1 SOD活性、GSH和MDA含量测定 | 第49-50页 |
| 4.3.2 ROS的检测 | 第50页 |
| 4.3.3 线粒体膜电位检测 | 第50-51页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第51-54页 |
| 4.4.1 OSC对ARPE-19 细胞SOD活性、GSH和MDA含量的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.2 OSC对ARPE-19 细胞ROS的影响 | 第52-53页 |
| 4.4.3 OSC对线粒体膜电位的影响 | 第53-54页 |
| 4.5 本章小结 | 第54-55页 |
| 第五章 OSC对乙醇损伤的小鼠的抗氧化作用研究 | 第55-62页 |
| 5.1 引言 | 第55页 |
| 5.2 实验仪器与材料 | 第55-56页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第55页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第55-56页 |
| 5.2.3 实验药品和试剂 | 第56页 |
| 5.3 实验方法 | 第56-58页 |
| 5.3.1 乙醇氧化损伤模型 | 第56页 |
| 5.3.2 血清的分离 | 第56页 |
| 5.3.3 MDA含量测定 | 第56-57页 |
| 5.3.4 SOD活性测定 | 第57页 |
| 5.3.5 GSH含量测定 | 第57-58页 |
| 5.4 实验结果与讨论 | 第58-60页 |
| 5.4.1 小鼠肝脏、肾脏等脏器的变化 | 第58-59页 |
| 5.4.2 OSC对小鼠血清中SOD活性、GSH和MDA含量的影响 | 第59-60页 |
| 5.5 本章小结 | 第60-62页 |
| 第六章 OSC抗氧化活性机制的研究 | 第62-70页 |
| 6.1 引言 | 第62页 |
| 6.2 实验仪器与材料 | 第62页 |
| 6.2.1 实验细胞与实验动物 | 第62页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第62页 |
| 6.2.3 实验药品和试剂 | 第62页 |
| 6.2.4 试剂的配制 | 第62页 |
| 6.3 实验方法 | 第62-65页 |
| 6.3.1 动物组织全蛋白的提取 | 第62-63页 |
| 6.3.2 ARPE-19 细胞全蛋白的提取 | 第63页 |
| 6.3.3 BCA法全蛋白定量 | 第63页 |
| 6.3.4 SDS-PAGE蛋白电泳 | 第63-64页 |
| 6.3.5 Western Blot检测 | 第64-65页 |
| 6.4 实验结果与讨论 | 第65-68页 |
| 6.4.1 BCA法测定蛋白标准曲线 | 第65页 |
| 6.4.2 OSC对ARPE-19 细胞中SIRT1及PGC-1α蛋白水平的影响 | 第65-66页 |
| 6.4.3 OSC对小鼠肝脏组织SIRT1及PGC-1α蛋白水平的影响 | 第66-67页 |
| 6.4.4 OSC对小鼠眼球STRT1及PGC-1α蛋白水平的影响 | 第67-68页 |
| 6.5 本章小结 | 第68-70页 |
| 第七章 总结与展望 | 第70-73页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
