| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语表 | 第9-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-27页 |
| 1 人类免疫缺陷病毒(HIV) | 第10-16页 |
| 1.1 HIV-1的颗粒结构 | 第10-11页 |
| 1.2 HIV-1基因组和其编码蛋白 | 第11-14页 |
| 1.3 HIV-1生命周期 | 第14-16页 |
| 2 CD4~+T细胞与HIV-1 | 第16-17页 |
| 3 CD4~+T细胞actin在HIV-1侵染过程中的作用 | 第17-20页 |
| 4 荧光成像在HIV-1研究中的应用 | 第20-25页 |
| 4.1 病毒融合 | 第21-22页 |
| 4.2 细胞质内病毒颗粒运输的可视化 | 第22-23页 |
| 4.3 病毒组装和出芽 | 第23-25页 |
| 5 超分辨荧光显微镜的发展及成像特点和前景 | 第25-26页 |
| 6 本研究的目的意义和主要研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 pEGFP-C1-Lifeact质粒的构建与验证 | 第27-39页 |
| 1 材料与方法 | 第27-36页 |
| 1.1 材料 | 第27-30页 |
| 1.2 实验方法 | 第30-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-38页 |
| 2.1 pEGFP-C1-Lifeact质粒双酶切核酸电泳验证 | 第36-37页 |
| 2.2 TZM-bl细胞F-actin标记 | 第37-38页 |
| 3 讨论 | 第38-39页 |
| 第三章 HIV-1病毒的标记与表征 | 第39-61页 |
| 1 材料与方法 | 第39-52页 |
| 1.1 材料 | 第39-42页 |
| 1.2 实验方法 | 第42-52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-59页 |
| 2.1 重组质粒pNL4-3~(MA-mCherry)的构建 | 第52-53页 |
| 2.2 标记HIV-1病毒的双荧光定位检测 | 第53-55页 |
| 2.3 标记HIV-1侵染活性验证 | 第55-56页 |
| 2.4 不同转染体系对HIV-1浓度的影响 | 第56-58页 |
| 2.5 不同转染体系对HIV-1滴度的影响 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 第四章 HIV-1侵染CD4~+T细胞实时成像 | 第61-75页 |
| 1 材料与方法 | 第61-66页 |
| 1.1 材料 | 第61-63页 |
| 1.2 实验方法 | 第63-66页 |
| 2 结果与分析 | 第66-73页 |
| 2.1 HIV-1侵染CD4~+T细胞实时成像 | 第66-70页 |
| 2.2 抑制剂预处理CD4~+T细胞实时成像分析 | 第70-73页 |
| 3 讨论 | 第73-75页 |
| 第五章 超分辨SIM成像应用于HIV-1侵染CD4~+T细胞实时成像 | 第75-85页 |
| 1 材料与方法 | 第75-78页 |
| 1.1 材料 | 第75-77页 |
| 1.2 实验方法 | 第77-78页 |
| 2 结果与分析 | 第78-83页 |
| 2.1 TZM-b1细胞超分辨SIM模式成像分辨率的比较 | 第78-80页 |
| 2.2 CD4~+T细胞超分辨SIM模式成像分辨率的比较 | 第80-81页 |
| 2.3 CD4~+T细胞F-actin超分辨SIM实时成像 | 第81-82页 |
| 2.4 HIV-1侵染CD4~+T细胞超分辨成像 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-85页 |
| 第六章 总结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
