| 中文摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 英文缩略词表 | 第5-8页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 第一章 固载化木聚糖酶CLEAs的制备 | 第9-24页 |
| 1.1 材料和仪器 | 第10页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第10页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第10页 |
| 1.2 分析方法 | 第10-11页 |
| 1.2.1 酶活的测定 | 第10-11页 |
| 1.2.2 固载化木聚糖酶CLEAs回收率的测定 | 第11页 |
| 1.3 实验方法 | 第11-13页 |
| 1.3.1 配制缓冲液 | 第11页 |
| 1.3.2 筛选合适的载体 | 第11-13页 |
| 1.3.3 固载化木聚糖酶CLEAs的制备 | 第13页 |
| 1.4 结果与讨论 | 第13-24页 |
| 1.4.1 各种pH缓冲液的配制 | 第13页 |
| 1.4.2 酶活的测定 | 第13-14页 |
| 1.4.3 载体的筛选结果 | 第14-15页 |
| 1.4.4 采用单因素法优化固定化条件 | 第15-20页 |
| 1.4.5 Central Composite Design(CCD)实验优化固定化条件 | 第20-24页 |
| 1.5 本章小结 | 第24页 |
| 第二章 固载化木聚糖酶CLEAs的酶学性质 | 第24-35页 |
| 2.1 材料和方法 | 第25页 |
| 2.1.1 主要药品及试剂 | 第25页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 溶液的配制 | 第25页 |
| 2.2.2 固载化木聚糖酶CLEAs的酶学性质 | 第25-27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-34页 |
| 2.3.1 溶液的配制 | 第27页 |
| 2.3.2 固载化木聚糖酶CLEAs的酶学性质 | 第27-34页 |
| 2.4 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 利用固载化木聚糖酶CLEAs制备低聚木糖 | 第35-45页 |
| 3.1 材料和仪器 | 第35-36页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第35页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第35-36页 |
| 3.2 分析方法 | 第36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-37页 |
| 3.3.1 缓冲液的配制 | 第36页 |
| 3.3.2 采用单因素法优化低聚木糖的制备条件 | 第36-37页 |
| 3.3.3 Central Composite Design(CCD)实验优化低聚木糖的制备条件 | 第37页 |
| 3.3.4 分析低聚木糖的组分 | 第37页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第37-44页 |
| 3.4.1 各种pH缓冲液的配制 | 第37页 |
| 3.4.2 采用单因素法优化低聚木糖的制备条件 | 第37-40页 |
| 3.4.3 Central Composite Design(CCD)实验优化低聚木糖的制备条件 | 第40-43页 |
| 3.4.4 分析低聚木糖的组分 | 第43-44页 |
| 3.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第四章 低聚木糖的抗氧化活性研究 | 第45-49页 |
| 4.1 材料和仪器 | 第45-46页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第45页 |
| 4.1.2 细胞株 | 第45页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第45-46页 |
| 4.2 实验方法 | 第46-47页 |
| 4.2.1 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的培养 | 第46页 |
| 4.2.2 测定HUVECs细胞存活率 | 第46页 |
| 4.2.3 实验分组收集细胞培养液及细胞 | 第46页 |
| 4.2.4 测定各组细胞中SOD、GSH-PX的活性 | 第46页 |
| 4.2.5 数据的分析处理 | 第46-47页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第47-48页 |
| 4.3.1 HUVECs细胞存活率的测定结果 | 第47页 |
| 4.3.2 低聚木糖对氧化损伤的HUVECs细胞中SOD、GSH-PX活性的影响 | 第47-48页 |
| 4.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 结论与展望 | 第49-50页 |
| 结论 | 第49页 |
| 展望 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 综述 | 第56-74页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
