| 中文摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 绪论 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-25页 |
| 1.1 痛觉的传导通路与传统治疗方法 | 第9-12页 |
| 1.1.1 痛觉的传导通路 | 第9-12页 |
| 1.1.2 疼痛的治疗方法 | 第12页 |
| 1.2 MeCP2的分子功能及其参与疼痛的机制 | 第12-19页 |
| 1.2.1 MeCP2的分子功能 | 第13-18页 |
| 1.2.2 MeCP2参与疼痛的机制 | 第18-19页 |
| 1.3 miRNAs的形成、功能及参与疼痛的机制 | 第19-25页 |
| 1.3.1 miRNAs的形成和功能 | 第20页 |
| 1.3.2 miRNAs参与疼痛的机制 | 第20-23页 |
| 1.3.3 miR-132由CREB诱导产生并调控MeCP2的内稳态表达 | 第23-25页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第25-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-28页 |
| 2.1.1 小鼠品系 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂及试剂盒 | 第25-26页 |
| 2.1.3 引物序列 | 第26页 |
| 2.1.4 主要缓冲液配制 | 第26-28页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-34页 |
| 2.2.1 小鼠基因型鉴定 | 第28-29页 |
| 2.2.2 足底机械阈值测定 | 第29页 |
| 2.2.3 甩尾实验 | 第29页 |
| 2.2.4 疼痛模型建立 | 第29-30页 |
| 2.2.5 冰冻切片及免疫荧光染色 | 第30页 |
| 2.2.6 蛋白提取及Western Blot蛋白免疫印迹 | 第30-31页 |
| 2.2.7 RNA提取 | 第31-32页 |
| 2.2.8 小RNA提取 | 第32-33页 |
| 2.2.9 RNA逆转录以及Real Time PCR检测 | 第33-34页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第34-45页 |
| 3.1 引言 | 第34-35页 |
| 3.2 MeCP2在野生型小鼠和转基因小鼠的基础表达 | 第35页 |
| 3.3 MeCP2对急性疼痛敏感性的影响 | 第35-36页 |
| 3.4 MeCP2在外周和中枢的表达 | 第36-37页 |
| 3.5 MeCP2通过中枢机制降低疼痛敏感性 | 第37-39页 |
| 3.6 CREB/miR-132通路参与MeCP2的保护作用 | 第39-41页 |
| 3.7 讨论 | 第41-44页 |
| 3.7.1 MeCP2在DRG和脊髓差异表达 | 第41页 |
| 3.7.2 疼痛与记忆有类似的机制 | 第41-42页 |
| 3.7.3 MeCP2参与热痛反应的机制 | 第42-43页 |
| 3.7.4 MeCP2的功能具有性别特异性 | 第43-44页 |
| 3.8 总结 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-55页 |
| 作者简介 | 第55页 |
