| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-25页 |
| 1.1 半乳糖酯 | 第14-16页 |
| 1.2 半乳糖脂的合成 | 第16-19页 |
| 1.2.1 单半乳糖甘油二酯MGDG的合成 | 第16-18页 |
| 1.2.2 双半乳糖甘油二酯DGDG的合成 | 第18-19页 |
| 1.3 MGD与逆境胁迫 | 第19-23页 |
| 1.3.1 MGD与低磷胁迫 | 第19-21页 |
| 1.3.2 MGD与盐胁迫 | 第21页 |
| 1.3.3 MGD与干旱胁迫 | 第21-22页 |
| 1.3.4 MGD与其他非生物胁迫 | 第22-23页 |
| 1.4 水稻中MGD的研究 | 第23页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
| 第二章 水稻MGD同源基因的克隆及生物信息分析 | 第25-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.3 结果与分析 | 第31-44页 |
| 2.3.1 水稻MGD同源基因的克隆 | 第31-34页 |
| 2.3.1.1 水稻叶片RNA的提取及反转录 | 第31页 |
| 2.3.1.2 OsMGD基因中间片段的克隆 | 第31-32页 |
| 2.3.1.3 OsMGD基因 3’端的克隆 | 第32-33页 |
| 2.3.1.4 OsMGD基因 5’端的克隆 | 第33页 |
| 2.3.1.5 OsMGD基因全长cDNA的克隆 | 第33-34页 |
| 2.3.2 水稻MGD同源基因的生物信息学分析 | 第34-44页 |
| 2.3.2.1 三个OsMGD基因序列及蛋白理化性质的分析 | 第34页 |
| 2.3.2.2 三个OsMGD基因与拟南芥中MGD基因的序列相似性分析 | 第34-36页 |
| 2.3.2.3 三个OsMGD的系统进化树分析 | 第36-38页 |
| 2.3.2.4 三个OsMGD蛋白亲/疏水性分析 | 第38页 |
| 2.3.2.5 三个OsMGD的转运肽预测分析 | 第38-39页 |
| 2.3.2.6 三个OsMGD的跨膜结构分析 | 第39页 |
| 2.3.2.7 三个OsMGD基因启动子序列分析 | 第39-40页 |
| 2.3.2.8 三个OsMGD基因的表达模式研究 | 第40-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-46页 |
| 2.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 水稻MGD同源基因超表达载体的构建及转化 | 第47-63页 |
| 3.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 3.2 实验方法 | 第48-52页 |
| 3.3 结果与分析 | 第52-61页 |
| 3.3.1 三个OsMGD超表达载体的构建 | 第52-57页 |
| 3.3.1.1 扩增基因全长并通过BP反应连接到pDONR载体 | 第52-54页 |
| 3.3.1.2 LR反应获得目的表达载体 | 第54-57页 |
| 3.3.1.3 根癌农杆菌C58C1的转化 | 第57页 |
| 3.3.2 转三个OsMGD基因烟草的获得与鉴定 | 第57-61页 |
| 3.3.2.1 农杆菌介导OsMGD基因的烟草遗传转化及转基因植株的再生 | 第57-58页 |
| 3.3.2.2 T_0代转基因烟草植株的PCR检测 | 第58-59页 |
| 3.3.2.3 T_0代转基因烟草中OsMGD基因表达量的测定 | 第59-61页 |
| 3.4 讨论 | 第61页 |
| 3.5 本章小结 | 第61-63页 |
| 第四章 转OsMGD基因烟草的表型分析 | 第63-70页 |
| 4.1 实验材料 | 第63页 |
| 4.2 实验方法 | 第63-65页 |
| 4.3 结果与分析 | 第65-68页 |
| 4.3.1 OsMGD基因超表达对烟草叶片生长的影响 | 第65-66页 |
| 4.3.2 OsMGD基因超表达对烟草叶绿素含量和类胡萝卜素含量的影响 | 第66-67页 |
| 4.3.3 OsMGD基因超表达对烟草光合参数的影响 | 第67-68页 |
| 4.4 讨论 | 第68-69页 |
| 4.5 本章小结 | 第69-70页 |
| 第五章 转OsMGD基因烟草在低磷胁迫下的功能研究 | 第70-94页 |
| 5.1 实验材料 | 第70-71页 |
| 5.2 实验方法 | 第71-74页 |
| 5.3 结果与分析 | 第74-90页 |
| 5.3.1 OsMGD基因超表达在低磷胁迫下对烟草植株生长的影响 | 第74-76页 |
| 5.3.2 OsMGD基因超表达在低磷胁迫下对烟草叶绿素含量的影响 | 第76页 |
| 5.3.3 OsMGD基因超表达在低磷胁迫下对烟草净光合速率的影响 | 第76-77页 |
| 5.3.4 低磷胁迫下烟草叶绿素荧光参数的变化 | 第77-79页 |
| 5.3.5 OsMGD基因超表达在低磷胁迫下对烟草脂质含量的影响 | 第79-82页 |
| 5.3.6 OsMGD基因超表达在低磷胁迫下对烟草脂质组分的影响 | 第82-84页 |
| 5.3.7 OsMGD基因超表达在低磷胁迫下对烟草脂肪酸组分的影响 | 第84-88页 |
| 5.3.8 OsMGD基因超表达在低磷胁迫下对烟草脂肪酸不饱和度的影响 | 第88页 |
| 5.3.9 低磷胁迫下烟草地上部分磷含量的变化 | 第88-90页 |
| 5.4 讨论 | 第90-92页 |
| 5.5 本章小结 | 第92-94页 |
| 第六章 本研究的主要结论和创新点 | 第94-98页 |
| 6.1 主要研究结果 | 第94-96页 |
| 6.1.1 水稻MGD同源基因的克隆和生物信息学分析 | 第94-95页 |
| 6.1.2 水稻MGD同源基因超表达载体的构建及转化 | 第95页 |
| 6.1.3 转OsMGD基因烟草的表型分析 | 第95页 |
| 6.1.4 转OsMGD基因烟草在低磷胁迫下的功能研究 | 第95-96页 |
| 6.2 本论文的创新点 | 第96-97页 |
| 6.3 下一步研究计划 | 第97-98页 |
| 6.3.1 对OsMGD/08g亚细胞定位的进一步研究 | 第97页 |
| 6.3.2 对水稻MGD同源基因在其他逆境胁迫下功能的进一步研究 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-107页 |
| 附录1 引物列表 | 第107-109页 |
| 附录2 MS（Murashige and Skoog）培养基的配制 | 第109-111页 |
| 缩略词表 | 第111-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 作者简介 | 第114页 |
