| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 主要符号表 | 第12-13页 |
| 第一篇 文献综述 | 第13-24页 |
| 第一章 金针菇的研究热点 | 第13-17页 |
| 1.1 金针菇的生物学概况 | 第13-14页 |
| 1.2 金针菇的营养价值 | 第14页 |
| 1.3 金针菇的药理作用 | 第14-16页 |
| 1.4 小结 | 第16-17页 |
| 第二章 真菌多糖的提取分离和结构解析 | 第17-23页 |
| 2.1 真菌多糖的提取、分离纯化和纯度鉴定方法 | 第17-18页 |
| 2.2 真菌多糖的分离纯化和纯度鉴定 | 第18页 |
| 2.3 多糖结构解析 | 第18-19页 |
| 2.4 化学分析法 | 第19-20页 |
| 2.5 仪器分析法 | 第20-21页 |
| 2.6 生物学法 | 第21-23页 |
| 第三章 研究目的与意义 | 第23-24页 |
| 第二篇 金针菇子实体多糖提取、分离纯化及理化性质研究 | 第24-32页 |
| 第一章 材料和方法 | 第24-27页 |
| 1.1 材料、仪器和方法 | 第24-25页 |
| 1.2 金针菇子实体粗多糖的分离纯化 | 第25页 |
| 1.3 均一多糖的理化性质 | 第25-27页 |
| 第二章 结果与分析 | 第27-31页 |
| 1 金针菇子实体粗多糖的分离纯化 | 第27-28页 |
| 1.1 粗多糖的离子柱层析 | 第27-28页 |
| 2 多糖的理化性质 | 第28-31页 |
| 2.1 多糖的凝胶柱层析纯度鉴定 | 第28页 |
| 2.2 均一多糖的含量测定和分子量确定 | 第28-29页 |
| 2.3 红外光谱的分析 | 第29-30页 |
| 2.4 紫外光谱分析 | 第30-31页 |
| 第三章 小结 | 第31-32页 |
| 第三篇 金针菇子实体均一多糖的结构研究 | 第32-50页 |
| 第一章 材料、仪器和方法 | 第32-35页 |
| 1 材料 | 第32页 |
| 2 仪器和试剂 | 第32-33页 |
| 2.1 仪器 | 第32页 |
| 2.2 试剂 | 第32-33页 |
| 3 方法 | 第33-35页 |
| 3.1 高效阴离子色谱分析 | 第33页 |
| 3.2 甲基化分析 | 第33-35页 |
| 第二章 结果与分析 | 第35-49页 |
| 1 FVPA2结构解析 | 第35-41页 |
| 1.1 单糖组成和比例分析 | 第35页 |
| 1.2 FVPA2的结构解析 | 第35-41页 |
| 2 FVPB2结构解析 | 第41-44页 |
| 2.1 单糖组成和比例分析 | 第41页 |
| 2.2 FVPB2 的结构解析 | 第41-44页 |
| 3 FVPA1结构解析 | 第44-48页 |
| 3.1 单糖组成和比例分析 | 第44页 |
| 3.2 甲基化分析 | 第44-45页 |
| 3.3 NMR解析 | 第45-48页 |
| 4 FVPB1结构解析 | 第48-49页 |
| 4.1 单糖组成 | 第48-49页 |
| 第三章 小结 | 第49-50页 |
| 第四篇 金针菇子实体均一多糖体外免疫活性研究 | 第50-72页 |
| 第一章 材料和方法 | 第50-52页 |
| 1 实验材料 | 第50-52页 |
| 1.1 主要材料 | 第50页 |
| 1.2 试剂 | 第50-51页 |
| 1.3 仪器 | 第51-52页 |
| 第二章 淋巴细胞实验方法 | 第52-57页 |
| 2 实验方法 | 第52-57页 |
| 2.1 小鼠脾淋巴细胞实验方法 | 第52-53页 |
| 2.1.1 淋巴细胞的制备 | 第52页 |
| 2.1.2 Alama blue法检测小鼠脾淋巴细胞增殖 | 第52页 |
| 2.1.3 淋巴细胞中CD19~+CD25~+细胞水平的检测 | 第52页 |
| 2.1.4 ELISA法检测淋巴细胞上清中免疫球蛋白IgG、IgM的分泌 | 第52-53页 |
| 2.2 分选后小鼠B淋巴细胞激活研究 | 第53-55页 |
| 2.2.1 免疫磁珠分选法分选小鼠B淋巴细胞 | 第53-54页 |
| 2.2.2 CFSE染色法检测分选后B淋巴细胞增殖 | 第54页 |
| 2.2.3 均一多糖对分选后B淋巴细胞中CD19~+CD25~+细胞水平的检测 | 第54页 |
| 2.2.4 ELISA法检测分选后B淋巴细胞上清中免疫球蛋白IgG、IgM的分泌 | 第54页 |
| 2.2.5 ELISA法检测调节性B细胞白细胞介素-10的分泌 | 第54页 |
| 2.2.6 胞内染色法检测四种抑制剂对调节性B细胞中白细胞介素-10变化的影响 | 第54-55页 |
| 2.3 小鼠T淋巴细胞激活 | 第55页 |
| 2.3.1 均一多糖对T淋巴细胞中CD3~+ CD25~+细胞水平的检测 | 第55页 |
| 2.3.2 Cytometric Bead Array（CBA）法检测样本中细胞因子分泌 | 第55页 |
| 2.4 四种均一多糖小鼠巨噬细胞激活研究 | 第55-57页 |
| 第三章 结果与分析 | 第57-71页 |
| 1.1 淋巴细胞实验结果分析 | 第57-59页 |
| 1.1.1 Alama blue法检测小鼠脾淋巴细胞增殖 | 第57页 |
| 1.1.2 淋巴细胞中CD19+/CD25+细胞水平的检测 | 第57-58页 |
| 1.1.3 ELISA法检测淋巴细胞上清中免疫球蛋白IgG/IgM的分泌 | 第58-59页 |
| 1.2 样品对小鼠B淋巴细胞免疫活性研究 | 第59-65页 |
| 1.2.1 免疫磁珠分选法分选小鼠B淋巴细胞 | 第59-60页 |
| 1.2.2 CFSE染色法检测分选后B淋巴细胞增殖情况 | 第60-61页 |
| 1.2.3 均一多糖对分选后B淋巴细胞中CD19+/CD25+细胞水平的检测 | 第61页 |
| 1.2.4 ELISA法检测分选后B淋巴细胞上清中免疫球蛋白IgG /IgM的分泌 | 第61-62页 |
| 1.2.5 ELISA法检测调节性B细胞（Breg）白细胞介素-10的分泌 | 第62-63页 |
| 1.2.6 胞内染色法检测四种抑制剂对调节性B细胞中白细胞介素-10变化的影响 | 第63-65页 |
| 1.3 小鼠T淋巴细胞激活情况 | 第65-68页 |
| 1.3.1 均一多糖对T淋巴细胞中CD3+/CD25+细胞水平的检测 | 第66页 |
| 1.3.2 Cytometric Bead Array（CBA）法检测样本中细胞因子分泌情况 | 第66-68页 |
| 1.4 小鼠巨噬细胞激活情况分析 | 第68-71页 |
| 1.4.1 均一多糖对RAW264.7 细胞释放NO活性的影响 | 第68-69页 |
| 1.4.2 ELISA法检测IL-6、TNF-α、IL-1β 细胞因子 | 第69-71页 |
| 第四章 小结 | 第71-72页 |
| 第五篇 全文总结 | 第72-75页 |
| 一、全文总结 | 第72-74页 |
| 二、创新点 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 作者简介 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第83-84页 |
| 附录 | 第84-99页 |
