| 中英文缩写词对照 | 第8-10页 |
| 中文摘要 | 第10-13页 |
| 英文摘要 | 第13-15页 |
| 1 前言 | 第16-17页 |
| 2 实验材料 | 第17-21页 |
| 2.1 实验动物 | 第17页 |
| 2.2 药品与试剂 | 第17-19页 |
| 2.2.1 抗体 | 第17-18页 |
| 2.2.2 主要药品与试剂 | 第18-19页 |
| 2.3 仪器与设备 | 第19-20页 |
| 2.4 图象分析软件 | 第20-21页 |
| 3 实验方法 | 第21-31页 |
| 3.1 实验动物的处理与模型的建立 | 第21页 |
| 3.2 大鼠肝星状细胞的培养 | 第21页 |
| 3.3 肝组织病理学检测 | 第21-22页 |
| 3.3.1 大鼠肝组织病理HE染色 | 第21页 |
| 3.3.2 大鼠肝组织病理Masson染色 | 第21-22页 |
| 3.4 免疫组织化学检测 | 第22页 |
| 3.5 MTT增殖实验 | 第22-23页 |
| 3.6 肝脏组织与肝星状细胞总RNA的提取和逆转录 | 第23-24页 |
| 3.6.1RNA提取 | 第23-24页 |
| 3.6.2 逆转录 | 第24页 |
| 3.7 PCR扩增实验 | 第24-25页 |
| 3.7.1 引物序列 | 第24-25页 |
| 3.7.2 Real-time PCR | 第25页 |
| 3.8 Western Blot实验 | 第25-30页 |
| 3.8.1 用液的配制 | 第25-27页 |
| 3.8.2 蛋白样品制备 | 第27-28页 |
| 3.8.3 SDS-PAGE电泳 | 第28-29页 |
| 3.8.4 转膜 | 第29页 |
| 3.8.5 抗原抗体反应 | 第29页 |
| 3.8.6 显影 | 第29页 |
| 3.8.7 显影结果的分析 | 第29-30页 |
| 3.9 siRNA实验 | 第30-31页 |
| 3.9.1 EZH2的siRNA实验 | 第30页 |
| 3.9.2 Dkk1的siRNA实验 | 第30-31页 |
| 3.10 统计学处理 | 第31页 |
| 4 实验结果 | 第31-49页 |
| 4.1 CCl_4诱导的大鼠肝组织中EZH2和Dkk1的表达变化 | 第31-34页 |
| 4.1.1 肝脏的组织病理学检测 | 第31-32页 |
| 4.1.2 CCl_4诱导的大鼠肝纤维化组织中 α-SMA、EZH2和Dkk1mRNA的表达变化 | 第32-33页 |
| 4.1.3 CCl_4诱导的大鼠肝纤维化组织中 α-SMA、EZH2和Dkk1蛋白的表达变化 | 第33-34页 |
| 4.2 TGF-β1 诱导的HSC-T6细胞中EZH2和Dkk1的表达变化 | 第34-36页 |
| 4.2.1 TGF-β1 诱导的HSC-T6细胞中 α-SMA、EZH2和Dkk1mRNA的表达变化 | 第34-35页 |
| 4.2.2 TGF-β1 诱导的HSC-T6细胞中 α-SMA、EZH2和Dkk1蛋白的表达变化 | 第35-36页 |
| 4.3 EZH2对TGF-β1 诱导的HSC-T6细胞增殖活化的影响 | 第36-40页 |
| 4.3.1 EZH2对TGF-β1 诱导的HSC-T6细胞增殖的影响 | 第36-37页 |
| 4.3.2 EZH2对TGF-β1 诱导的HSC-T6细胞活化的影响 | 第37-40页 |
| 4.4 EZH2影响HSCs增殖活化的部分机制研究 | 第40-49页 |
| 4.4.1 EZH2介导Dkk1的表达下降激活了Wnt/β-catenin通路从而影响HSCs的增殖活化 | 第40-48页 |
| 4.4.2 EZH2通过激活ERK和PI3K/AKT通路从而促进HSCs的增殖活化 | 第48-49页 |
| 5 讨论 | 第49-54页 |
| 6 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 综述 | 第63-83页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
