| 中文摘要 | 第3-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第一部 EGCG对Cd~(2+)诱导细胞损伤的拮抗效应 | 第15-55页 |
| 第一章 前言 | 第15-30页 |
| 1.1 镉简介 | 第15-20页 |
| 1.1.1 环境及人体镉暴露途径 | 第16-17页 |
| 1.1.2 镉对人体组织的毒性效应 | 第17页 |
| 1.1.3 镉的肝脏毒性效应及其机制 | 第17-20页 |
| 1.2 表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)简介 | 第20-22页 |
| 1.3 EGCG拮抗Cd~(2+)毒性效应的潜能 | 第22-30页 |
| 1.3.1 镉引起细胞内氧化胁迫 | 第22-24页 |
| 1.3.2 EGCG的抗氧化活性 | 第24页 |
| 1.3.3 镉诱导细胞凋亡发生 | 第24-25页 |
| 1.3.4 ECCG对金属离子的螯合潜能及生物活性 | 第25-27页 |
| 1.3.5 EGCG与金属离子螯合作用的影响因素 | 第27-30页 |
| 第二章 材料与方法 | 第30-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第30-32页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第30页 |
| 2.1.2 主要化学试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.3 实验仪器和设备 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-39页 |
| 2.2.1 细胞培养处理 | 第32页 |
| 2.2.2 细胞活力检测 | 第32-33页 |
| 2.2.3 细胞凋亡测定 | 第33-34页 |
| 2.2.4 细胞内氧化应激指标检测 | 第34-35页 |
| 2.2.5 线粒体膜电位检测 | 第35-36页 |
| 2.2.6 Caspase 3活力检测 | 第36页 |
| 2.2.7 EGCG和Cd~(2+)螯合反应检测 | 第36-39页 |
| 2.3 统计分析 | 第39-40页 |
| 第三章 实验结果 | 第40-50页 |
| 3.1 EGCG能够抑制Cd~(2+)诱导HL-7702细胞活力下降 | 第40-41页 |
| 3.2 EGCG能够抑制Cd~(2+)诱导HL-7702细胞发生凋亡 | 第41-42页 |
| 3.3 EGCG能够缓解Cd~(2+)引发的细胞内氧化胁迫 | 第42-44页 |
| 3.3.1 EGCG能够有效清除细胞内的ROS水平 | 第42-43页 |
| 3.3.2 EGCG能够有效降低细胞内脂质过氧化产物MDA含量 | 第43-44页 |
| 3.4 EGCG对Cd~(2+)造成的细胞内线粒体损伤的保护效应 | 第44-45页 |
| 3.5 EGCG和Cd~(2+)对caspase 3活性的影响 | 第45-46页 |
| 3.6 EGCG与Cd~(2+)螯合反应检测 | 第46-50页 |
| 3.6.1 UV-Vis检测EGCG与Cd~(2+)螯合反应 | 第46-47页 |
| 3.6.2 核磁共振质谱检测EGCG与Cd~(2+)螯合反应 | 第47-50页 |
| 第四章 讨论与结论 | 第50-55页 |
| 4.1 EGCG对镉细胞毒性的拮抗效应 | 第50页 |
| 4.2 EGCG作为抗氧化剂对镉细胞毒性的影响 | 第50-52页 |
| 4.3 EGCG与Cd~(2+)间的螯合反应 | 第52-54页 |
| 4.4 主要结论 | 第54-55页 |
| 第二部分 SiO_2-NPs对人结肠癌HCT116细胞毒性机制研究 | 第55-103页 |
| 第一章 前言 | 第55-68页 |
| 1.1 纳米材料简介 | 第55-56页 |
| 1.2 NPs的生物安全性 | 第56-57页 |
| 1.3 NPs进入机体的主要途径 | 第57-59页 |
| 1.4 NPs的生物学效应 | 第59-65页 |
| 1.4.1 NPs与细胞毒性 | 第59-60页 |
| 1.4.2 NPs自身特性对其生物学效应的影响 | 第60-61页 |
| 1.4.3 NPs与蛋白质的相互作用及对其生物学效应的影响 | 第61-64页 |
| 1.4.4 NPs与细胞凋亡 | 第64-65页 |
| 1.5 SiO_2-NPs及相关毒性研究 | 第65-68页 |
| 1.5.1 SiO_2-NPs的体内毒性效应 | 第65-66页 |
| 1.5.2 SiO_2-NPs的体外毒性效应 | 第66-68页 |
| 第二章 材料与方法 | 第68-78页 |
| 2.1 实验材料 | 第68-70页 |
| 2.1.1 人结肠癌细胞系 | 第68页 |
| 2.1.2 SiO_2-NPs悬液的制备 | 第68-70页 |
| 2.2 实验方法 | 第70-77页 |
| 2.2.1 细胞死亡分析-高通量荧光显微镜检测 | 第70-73页 |
| 2.2.2 细胞活力检测-alamarBlue检测法 | 第73-74页 |
| 2.2.3 细胞膜完整性检测-乳酸脱氢酶检测法 | 第74-75页 |
| 2.2.4 蛋白质对SiO_2-NPs细胞毒性影响检测 | 第75-76页 |
| 2.2.5 相关蛋白表达检测-Western Blotting | 第76-77页 |
| 2.3 统计分析 | 第77-78页 |
| 第三章 实验结果 | 第78-94页 |
| 3.1 不同浓度和时间SiO_2-NPs对HCT116细胞的毒性效应 | 第78-85页 |
| 3.1.1 高通量荧光显微镜对细胞数量及形态检测结果 | 第78-83页 |
| 3.1.2 alamarBlue及LDH法对SiO_2-NPs的细胞毒性检测结果 | 第83-85页 |
| 3.2 不同粒径的SiO_2-NPs及SiO_2-MPs对HCT116细胞的毒性效应 | 第85-87页 |
| 3.3 不同修饰的SiO_2-NPs对HCT116细胞的毒性效应 | 第87-89页 |
| 3.4 不同蛋白质对SiO_2-NPs细胞毒性的效应的影响 | 第89-91页 |
| 3.5 SiO_2-NPs对凋亡信号通路重要调控因子的影响 | 第91-94页 |
| 第四章 讨论与结论 | 第94-102页 |
| 4.1 不同粒径和修饰的SiO_2颗粒对HCT116细胞的毒性效应 | 第94-96页 |
| 4.2 SiO_2-NPs对细胞形态的影响 | 第96页 |
| 4.3 SiO_2-NPs对细胞活力的影响 | 第96-97页 |
| 4.4 SiO_2-NPs对细胞凋亡的影响 | 第97-98页 |
| 4.5 蛋白质对SiO_2-NPs细胞毒性效应的影响 | 第98-99页 |
| 4.6 SiO_2-NPs细胞毒性作用的可能机制 | 第99-100页 |
| 4.7 主要结论 | 第100-102页 |
| 第五章 研究展望 | 第102-103页 |
| 主要缩略词(Abbreviations) | 第103-105页 |
| 参考文献 | 第105-121页 |
| 在学期间的研究成果 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
