| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-23页 |
| ·视网膜色素变性及RCS大鼠模型综述 | 第13-16页 |
| ·视网膜色素变性疾病 | 第13-14页 |
| ·视网膜色素变性的常见治疗方法 | 第14-15页 |
| ·视网膜色素变性RCS大鼠动物模型 | 第15-16页 |
| ·视网膜小胶质细胞综述 | 第16-19页 |
| ·静息的小胶质细胞 | 第17页 |
| ·小胶质细胞的活化 | 第17-18页 |
| ·小胶质细胞与中枢神经系统的损伤 | 第18页 |
| ·小胶质细胞与视神经的损伤 | 第18-19页 |
| ·乳汁球上皮生长因子-8综述 | 第19-20页 |
| ·细胞凋亡的研究 | 第19-20页 |
| ·乳汁球上皮生长因子-8的研究 | 第20页 |
| ·相关细胞因子综述 | 第20-23页 |
| ·细胞粘附分子αv和β5 | 第21页 |
| ·早期炎性细胞因子TNF-α和IL-1β | 第21-22页 |
| ·趋化细胞因子MCP-1 | 第22-23页 |
| 第2章 绪论 | 第23-27页 |
| ·选题背景与意义 | 第23-25页 |
| ·研究目的和主要研究内容 | 第25页 |
| ·研究目的 | 第25页 |
| ·主要研究内容 | 第25页 |
| ·创新之处 | 第25-27页 |
| 第3章 小胶质细胞在RCS大鼠视网膜变性过程中的活化 | 第27-33页 |
| ·前言 | 第27页 |
| ·材料 | 第27-28页 |
| ·实验动物 | 第27-28页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第28页 |
| ·方法 | 第28-29页 |
| ·组织切片的制备 | 第28-29页 |
| ·免疫荧光染色检测视网膜小胶质细胞 | 第29页 |
| ·结果 | 第29-31页 |
| ·本章小结 | 第31-33页 |
| 第4章 MFG-E8在RCS大鼠视网膜中的表达 | 第33-39页 |
| ·前言 | 第33-34页 |
| ·材料 | 第34-35页 |
| ·实验动物 | 第34页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第34-35页 |
| ·方法 | 第35-36页 |
| ·组织切片的制备 | 第35-36页 |
| ·免疫荧光染色检测MFG-E8 | 第36页 |
| ·结果 | 第36-37页 |
| ·本章小结 | 第37-39页 |
| 第5章 MFG-E8与视网膜小胶质细胞的关系研究 | 第39-45页 |
| ·前言 | 第39页 |
| ·材料 | 第39-40页 |
| ·实验动物 | 第39页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第39-40页 |
| ·方法 | 第40-41页 |
| ·组织切片的制备 | 第40-41页 |
| ·免疫荧光染色检测CD11b和MFG-E8 | 第41页 |
| ·结果 | 第41-42页 |
| ·本章小结 | 第42-45页 |
| 第六章 CD11B、MFG-E8及相关细胞因子的MRNA在视网膜发育和变性过程中的表达变化 | 第45-57页 |
| ·前言 | 第45-46页 |
| ·材料 | 第46-47页 |
| ·实验动物 | 第46-47页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第47页 |
| ·方法 | 第47-51页 |
| ·引物设计与合成 | 第47-48页 |
| ·视网膜总RNA的提取 | 第48-49页 |
| ·RNA的定量 | 第49页 |
| ·cDNA的制备 | 第49-50页 |
| ·Real-time PCR | 第50-51页 |
| ·数据分析及统计学处理 | 第51页 |
| ·结果 | 第51-55页 |
| ·总RNA提取结果 | 第51页 |
| ·Real-time PCR结果 | 第51-52页 |
| ·MFG-E8以及整合素αv和β5在视网膜中的mRNA表达变化 | 第52-53页 |
| ·CD11b以及细胞因子在视网膜中的mRNA表达变化 | 第53-55页 |
| ·本章小结 | 第55-57页 |
| 第七章 全文结论 | 第57-59页 |
| ·全文结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67-69页 |
| 附录 | 第69页 |
