摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 引言 | 第9-12页 |
2 实验材料和方法 | 第12-15页 |
2.1 实验材料 | 第12-13页 |
2.1.1 果蝇的培养 | 第12页 |
2.1.2 实验果蝇的培养 | 第12页 |
2.1.3 实验药品 | 第12页 |
2.1.4 实验仪器 | 第12-13页 |
2.2 黑腹果蝇生殖能力测定 | 第13页 |
2.3 黑腹果蝇运动分析 | 第13页 |
2.4 统计与分析 | 第13-14页 |
2.5 黑腹果蝇脑切片的制备 | 第14页 |
2.6 抗体的来源和特性 | 第14页 |
2.7 免疫组化过程 | 第14-15页 |
3 结果 | 第15-23页 |
3.1 试验梯度浓度的选择 | 第15页 |
3.2 实验果蝇生殖能力测定 | 第15-18页 |
3.2.1 黑腹果蝇首次出现幼虫、化蛹和成蝇的时间 | 第15-17页 |
3.2.2 黑腹果蝇每日化蛹的数量 | 第17页 |
3.2.3 黑腹果蝇蛹的长度测定 | 第17-18页 |
3.3 实验果蝇运动能力测定 | 第18-19页 |
3.4 黑腹果蝇水平切TH神经元免疫组化反应模式 | 第19-23页 |
3.4.1 对照组果蝇水平切TH神经元免疫组化反应模式 | 第19-21页 |
3.4.2 α-MT抑制剂处理的果蝇水平切TH神经元免疫组化反应模式 | 第21-23页 |
4 讨论 | 第23-29页 |
4.1 α-MT致使黑腹果蝇生长周期延缓甚至停止 | 第23-24页 |
4.2 α-MT使黑腹果蝇运动能力降低伴随帕金森病症状 | 第24-25页 |
4.3 α-MT处理的黑腹果蝇脑内DA(TH)神经元部分缺失 | 第25-27页 |
4.4 果蝇帕金森病模型的科学意义 | 第27-29页 |
5 结论 | 第29-31页 |
参考文献 | 第31-35页 |
缩略语 | 第35-36页 |
图版说明 | 第36-38页 |
图版 | 第38-41页 |
致谢 | 第41页 |