| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1. 前言 | 第10-18页 |
| 1.1 植物机体内的ROS | 第10-12页 |
| 1.1.1 植物活性氧的产生 | 第10-11页 |
| 1.1.2 植物活性氧的清除 | 第11页 |
| 1.1.3 非生物胁迫及激素信号转导途径中活性氧的作用 | 第11-12页 |
| 1.2 植物过氧化物酶的研究 | 第12-14页 |
| 1.2.1 过氧化物酶的结构 | 第13页 |
| 1.2.2 过氧化物酶在胁迫响应和激素作用途径中的作用机理 | 第13-14页 |
| 1.3 植物中活性氧物质与过氧化物酶的关系 | 第14-16页 |
| 1.3.1 植物中活性氧与过氧化物酶在植物非生物胁迫中的关系 | 第15页 |
| 1.3.2 植物中活性氧与过氧化物酶在植物激素信号途径中的关系 | 第15-16页 |
| 1.4 论文研究的目的及意义 | 第16-17页 |
| 1.5 论文研究的技术路线 | 第17-18页 |
| 2. 材料与方法 | 第18-34页 |
| 2.1 材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 材料 | 第18页 |
| 2.1.2 试剂 | 第18-20页 |
| 2.1.3 常用仪器 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-34页 |
| 2.2.1 烟草Ntpx基因的电子克隆 | 第20页 |
| 2.2.2 烟草Ntpx基因序列的获得 | 第20-25页 |
| 2.2.3 Ntpx基因的生物信息学分析 | 第25页 |
| 2.2.4 pET30a(+)-Ntpx融合表达载体构建 | 第25-27页 |
| 2.2.5 构建pBI121-Ntpx-GFP融合表达载体 | 第27-28页 |
| 2.2.6 农杆菌EHA105的感受态的制备及转化 | 第28-29页 |
| 2.2.7 洋葱表皮细胞预培养 | 第29页 |
| 2.2.8 农杆菌介导的Ntpx蛋白在洋葱表皮细胞中的定位观察 | 第29页 |
| 2.2.9 Ntpx蛋白的定性鉴定实验 | 第29-30页 |
| 2.2.10 Ntpx蛋白的定量试验 | 第30-32页 |
| 2.2.11 材料培育 | 第32页 |
| 2.2.12 材料处理 | 第32-34页 |
| 3. 结果与分析 | 第34-49页 |
| 3.1 Ntpx基因的克隆及序列分析 | 第34-37页 |
| 3.1.1 Ntpx基因的克隆 | 第34-35页 |
| 3.1.2 Ntpx基因的生物信息学分析 | 第35-37页 |
| 3.2 Ntpx基因的表达特性分析 | 第37-44页 |
| 3.2.1 Ntpx基因的组织表达特性 | 第38页 |
| 3.2.2 Ntpx基因在干旱胁迫诱导条件下的表达特性 | 第38-39页 |
| 3.2.3 Ntpx基因在高盐胁迫诱导条件下的表达特性 | 第39-40页 |
| 3.2.4 Ntpx基因在低温胁迫诱导条件下的表达特性 | 第40页 |
| 3.2.5 Ntpx基因在高温胁迫诱导条件下的表达特性 | 第40-41页 |
| 3.2.6 Ntpx基因在不同植物激素诱导下的表达特性 | 第41-44页 |
| 3.3 洋葱表皮细胞中Ntpx的亚细胞定位 | 第44-45页 |
| 3.4 Ntpx蛋白的原核表达及酶的比活力测定 | 第45-49页 |
| 4. 讨论分析 | 第49-54页 |
| 4.1 Ntpx基因表达的蛋白是Px家族的一个亚家族蛋白 | 第49页 |
| 4.2 Ntpx基因的表达受到非生物胁迫应答和植物激素的调控 | 第49-52页 |
| 4.3 Ntpx蛋白在核上的定位 | 第52页 |
| 4.4 Ntpx蛋白的原核表达及最佳原核表达条件筛选 | 第52-54页 |
| 5. 结论、创新点及下一步工作计划 | 第54-55页 |
| 5.1 结论 | 第54页 |
| 5.2 创新点 | 第54页 |
| 5.3 下一步研究工作计划 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 附录 | 第63-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 作者简介 | 第68页 |
