| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-24页 |
| ·光合细菌的概述 | 第8-21页 |
| ·光合成反应 | 第8-9页 |
| ·光合细菌的国内外研究进展 | 第9-13页 |
| ·紫色光合细菌捕光系统概述 | 第13-16页 |
| ·光合细菌的基因构造 | 第16页 |
| ·紫色非硫光合成细菌Rhodobacter(Rb.) sphaeroides | 第16-17页 |
| ·红色硫磺光合细菌Thermochromatium(Tch.) tepidum | 第17-21页 |
| ·本文的研究目的和整体思路 | 第21-22页 |
| ·本文的研究目的和意义 | 第21-22页 |
| ·整体研究思路框架 | 第22页 |
| ·研究内容和技术路线 | 第22-24页 |
| ·Tch.tepidum LHI(Ttp.pufBA) 基因克隆 | 第22页 |
| ·Tch.tepidum LHI突变体(Ttp.mpufBA) 的制备 | 第22-23页 |
| ·Ttp.mpu/BA表达载体的构建及表达 | 第23-24页 |
| 第二章 材料和方法 | 第24-44页 |
| ·Tch.tepidum pufBA 基因的克隆 | 第24-30页 |
| ·试验菌株与质粒 | 第24页 |
| ·主要仪器设备 | 第24页 |
| ·主要试剂及配制方法 | 第24-26页 |
| ·Tch.tepidum 染色体DNA的抽提 | 第26页 |
| ·Tch.tepidum pufBA 基因的扩增、克隆及测序 | 第26-30页 |
| ·Tch.tepidum突变体(Ttp.mpufBA)的制备 | 第30-35页 |
| ·试验菌株与质粒 | 第30-31页 |
| ·主要仪器与设备 | 第31页 |
| ·主要试剂和配制方法 | 第31页 |
| ·pMD18-T-BA质粒与pUC18质粒的提取与胶回收 | 第31-32页 |
| ·pUC18-BA重组质粒构建 | 第32-33页 |
| ·红色硫磺光合成细菌Ach.vinosum的培养 | 第33页 |
| ·重组突变体 (pUC18-mBA)的制备 | 第33-35页 |
| ·Ttp.mpufBA表达载体的构建与表达 | 第35-39页 |
| ·试验菌株与质粒 | 第35页 |
| ·主要仪器与设备 | 第35页 |
| ·主要试剂和配制方法 | 第35-36页 |
| ·pRK404mmBA表达质粒的构建 | 第36-39页 |
| ·结合转移方法的建立与稳定结合子的筛选 | 第39-44页 |
| ·试验菌株与质粒 | 第39页 |
| ·主要仪器设备 | 第39页 |
| ·主要试剂与配制方法 | 第39-41页 |
| ·滤膜接合法质粒接合转移方法的建立 | 第41-42页 |
| ·接合转移方法的优化 | 第42-43页 |
| ·接合转化子筛选及稳定接合子的测定 | 第43页 |
| ·接合转化子的表达 | 第43-44页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第44-54页 |
| ·Tch.tepidum pufBA 基因的克隆 | 第44-46页 |
| ·Tch.tepidum pufBA 基因的克隆鉴定 | 第44页 |
| ·Tch.tepidum pufBA 基因的测序结果 | 第44-46页 |
| ·Tch.tepidum突变体(Ttp.mpuf BA)的制备、筛选和鉴定 | 第46-48页 |
| ·pUC18-BA 重组质粒的构建、筛选和鉴定 | 第46-47页 |
| ·重组突变体(pUC18-mBA)的制备及条件优化 | 第47-48页 |
| ·突变体Ttp.mpuf BA 表达载体的构建 | 第48-49页 |
| ·pRK404mmBA 表达质粒的构建 | 第48页 |
| ·pRK404mmBA 表达质粒的测序结果 | 第48-49页 |
| ·接合转移与稳定接合子的表达 | 第49-52页 |
| ·接合转移实验的最适盐酸四环素浓度优化 | 第49-50页 |
| ·转移接合子Rbs (pRK404mmBA)、Rbs (pRK404mBA) 的筛选 | 第50页 |
| ·转移接合子的质粒提取与电泳鉴定 | 第50-51页 |
| ·稳定接合子的表达 | 第51-52页 |
| ·S17-1(pRK404mmBA) 在 Rb.sphaeroidesΔQ-X中的接合转移讨论 | 第52-53页 |
| ·稳定接合子的表达结果讨论 | 第53-54页 |
| 第四章 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
