| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-13页 |
| 中英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 第1章 引言 | 第14-16页 |
| 第2章 PXT 对大鼠及人肝微粒体中 CYP3A 介导的 MDZ 羟化代谢影响 | 第16-26页 |
| ·材料 | 第16-17页 |
| ·主要仪器 | 第16页 |
| ·主要药品与试剂 | 第16-17页 |
| ·方法 | 第17-18页 |
| ·溶液的配制 | 第17页 |
| ·NADPH 温孵体系及样品处理方法 | 第17页 |
| ·MDZ、4-OH-MDZ 及 1′-OH-MDZ 的 HPLC 测定条件 | 第17页 |
| ·PXT 对 RLM 中 CYP3A 介导的 MDZ 羟化代谢影响 | 第17-18页 |
| ·PXT 对 HLM 中 CYP3A 介导的 MDZ 羟化代谢影响 | 第18页 |
| ·数据分析 | 第18页 |
| ·结果 | 第18-24页 |
| ·4-OH-MDZ 及 1′-OH-MDZ HPLC 方法学评价 | 第18-20页 |
| ·PXT 对 RLM 中 CYP3A 介导的 MDZ 羟化代谢影响 | 第20-21页 |
| ·PXT 对 HLM 中 CYP3A 介导的 MDZ 羟化代谢影响 | 第21-22页 |
| ·PXT 对 RLM 及 HLM 中 CYP3A 介导的 MDZ 羟化代谢动力学影响 | 第22-24页 |
| ·讨论 | 第24-26页 |
| 第3章 PXT 对大鼠原代肝细胞中 CYP3A 介导的 MDZ 羟化代谢影响 | 第26-47页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·实验动物 | 第26页 |
| ·主要仪器与设备 | 第26页 |
| ·主要药品与试剂 | 第26-27页 |
| ·方法 | 第27-32页 |
| ·溶液的配制 | 第27-28页 |
| ·大鼠原代肝细胞的分离 | 第28页 |
| ·4-OH-MDZ、1′-OH-MDZ 的 LC-MS 检测条件 | 第28-29页 |
| ·肝细胞样品处理过程 | 第29页 |
| ·MDZ、PXT 对大鼠原代肝细胞的毒性作用 | 第29-30页 |
| ·大鼠原代肝细胞中蛋白含量的测定（BCA 法） | 第30页 |
| ·细胞代谢活性的测定 | 第30-31页 |
| ·MDZ 在大鼠原代肝细胞中的代谢条件的确定 | 第31页 |
| ·PXT、DEX 及 KTZ 对咪达唑仑 4-OH 及 1′-OH 代谢通路的影响. | 第31-32页 |
| ·数据处理 | 第32页 |
| ·结果 | 第32-44页 |
| ·大鼠原代肝细胞的形态学、活率 | 第32-33页 |
| ·4-OH-MDZ、1′-OH-MDZ LC-MS 测定方法的评价 | 第33-35页 |
| ·MDZ、PXT 对大鼠原代肝细胞的毒性作用 | 第35-36页 |
| ·大鼠原代肝细胞中蛋白含量的测定（BCA 法） | 第36页 |
| ·细胞代谢活性测定结果 | 第36-37页 |
| ·咪达唑仑在大鼠原代肝细胞中的代谢 | 第37-40页 |
| ·PXT、DEX 及 KTZ 对 MDZ 不同羟化代谢通路的影响 | 第40-44页 |
| ·讨论 | 第44-47页 |
| 第4章 PXT 对大鼠原代肝细胞中 CYP3A1/2 mRNA 表达的影响 | 第47-55页 |
| ·材料 | 第47-48页 |
| ·实验动物 | 第47页 |
| ·主要仪器与设备 | 第47页 |
| ·主要药品与试剂 | 第47-48页 |
| ·方法 | 第48-50页 |
| ·PXT 对大鼠原代肝细胞中 CYP3A1/2mRNA 表达的影响 | 第48页 |
| ·RT-PCR 反应 | 第48-50页 |
| ·数据处理 | 第50页 |
| ·结果 | 第50-53页 |
| ·RNA 的电泳结果 | 第50页 |
| ·PXT 对大鼠原代肝细胞中 CYP3A1 mRNA 表达的影响 | 第50-52页 |
| ·PXT 对大鼠原代肝细胞中 CYP3A2 mRNA 表达的影响 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| 第5章 结论与展望 | 第55-57页 |
| ·结论 | 第55页 |
| ·展望 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第62-63页 |
| 综述 | 第63-74页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
