| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-19页 |
| ·植物与害虫相互作用研究进展 | 第11-14页 |
| ·cDNA-AFLP 技术在植物研究中的应用 | 第14-15页 |
| ·SAMT 的基本特征 | 第15-18页 |
| ·SAMT 在非生物及生物逆境诱导防御中的作用 | 第18-19页 |
| 2 引言 | 第19-21页 |
| ·研究意义与目的 | 第19页 |
| ·研究内容 | 第19-20页 |
| ·技术路线 | 第20-21页 |
| 3 材料与方法 | 第21-37页 |
| ·试验材料及处理 | 第21页 |
| ·试验材料 | 第21页 |
| ·试验处理 | 第21页 |
| ·仪器与试剂 | 第21-23页 |
| ·主要仪器设备 | 第21-22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·实验中常用试剂配方 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-37页 |
| ·总 RNA 的提取和检测 | 第23-25页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第25-26页 |
| ·cDNA 第二链的合成及末端平滑化 | 第26页 |
| ·cDNA 的精制 | 第26页 |
| ·cDNA-AFLP 分析 | 第26-28页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳及银染 | 第28-29页 |
| ·差异条带的回收、克隆、测序 | 第29-31页 |
| ·差异片段的 qRT-PCR 分析 | 第31-32页 |
| ·CsSAMT 的全长克隆 | 第32-34页 |
| ·CsSAMT 的生物信息学分析 | 第34页 |
| ·CsSAMT 的原核表达 | 第34-36页 |
| ·CsSAMT 表达特征的 qRT-PCR 分析 | 第36-37页 |
| 4 结果分析 | 第37-59页 |
| ·茶树叶片总 RNA 的提取与检测 | 第37页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第37页 |
| ·提取 RNA 的纯度检测 | 第37页 |
| ·预扩及选扩效果检测 | 第37-38页 |
| ·预扩效果检测 | 第37-38页 |
| ·选扩效果检测 | 第38页 |
| ·变性凝胶电泳结果分析 | 第38-39页 |
| ·差异片段回收、验证结果分析 | 第39-44页 |
| ·差异片段克隆及测序 | 第39-40页 |
| ·差异片段序列分析 | 第40-44页 |
| ·部分差异条带 qRT-PCR 分析 | 第44-47页 |
| ·qRT-PCR 标准曲线的确定 | 第44-46页 |
| ·四个差异条带的表达特征分析 | 第46-47页 |
| ·CsSAMT 的全长 cDNA 克隆及序列分析 | 第47-54页 |
| ·CsSAMT 的 3’/5’-RACE 克隆 | 第47-48页 |
| ·CsSAMT 的全长序列验证 | 第48-49页 |
| ·CsSAMT 的序列分析 | 第49-54页 |
| ·CsSAMT 的原核表达 | 第54-57页 |
| ·CsSAMT 的 ORF 扩增 | 第54页 |
| ·重组体表达载体的双酶切验证 | 第54-55页 |
| ·CsSAMT 的原核表达优化 | 第55-57页 |
| ·CsSAMT 的表达特征分析 | 第57-59页 |
| ·实时荧光定量 PCR 标准曲线的确定 | 第57页 |
| ·茶尺蠖取食诱导 CsSAMT 的表达特征分析 | 第57-58页 |
| ·MeJA 处理对 CsSAMT 的表达特征影响分析 | 第58-59页 |
| 5 讨论 | 第59-65页 |
| ·cDNA-AFLP 技术 | 第59-60页 |
| ·差异片段序列功能分析及预测 | 第60-62页 |
| ·CsSAMT 的全长克隆和序列分析 | 第62-63页 |
| ·CsSAMT 的原核表达和优化 | 第63页 |
| ·CsSAMT 的表达特征分析 | 第63-65页 |
| 6 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 附录A 中英文缩写与注释 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简介 | 第73页 |
| 成果清单 | 第73页 |